| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 缩写词表 | 第11-12页 |
| 1 绪论 | 第12-20页 |
| 1.1 花色苷和吡喃花色苷衍生物的研究进展 | 第12-17页 |
| 1.1.1 花色苷和吡喃花色苷衍生物的概况 | 第12-14页 |
| 1.1.2 花色苷和吡喃花色苷衍生物的化学结构和稳定性 | 第14-15页 |
| 1.1.3 花色苷和吡喃花色苷衍生物的的生物活性和吸收代谢 | 第15-17页 |
| 1.2 吡喃酮型花色苷衍生物的概述 | 第17-18页 |
| 1.3 研究目的与意义 | 第18页 |
| 1.4 研究内容 | 第18-20页 |
| 2 吡喃酮型花色苷衍生物Oxovitisin A的制备条件优化及HPLC-MS/MS分析 | 第20-33页 |
| 2.1 引言 | 第20页 |
| 2.2 材料与方法 | 第20-25页 |
| 2.2.1 材料与试剂 | 第20-21页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第21页 |
| 2.2.3 Oxovitisin A的合成及形成机制 | 第21-22页 |
| 2.2.4 Oxovitisin A的质量浓度及得率计算 | 第22-23页 |
| 2.2.5 Oxovitisin A的合成试验设计 | 第23-24页 |
| 2.2.6 Oxovitisin A产物的高效液相色谱分析 | 第24页 |
| 2.2.7 Oxovitisin A的高效液相色谱串联质谱分析 | 第24页 |
| 2.2.8 Mv-3O-gluc、Vitisin A和Oxovitisin A的纯化与表征 | 第24-25页 |
| 2.2.9 Oxovitisin A纯度的测定 | 第25页 |
| 2.3 数据分析 | 第25页 |
| 2.4 结果与分析 | 第25-32页 |
| 2.4.1 影响Oxovitisin A得率的单因素结果分析 | 第25-28页 |
| 2.4.2 正交试验结果分析 | 第28页 |
| 2.4.3 反应产物的高效液相色谱分析 | 第28-29页 |
| 2.4.4 反应主要产物的高效液相色谱串联质谱分析结果 | 第29-31页 |
| 2.4.5 Oxovitisin A的纯化结果分析 | 第31-32页 |
| 2.5 结论 | 第32-33页 |
| 3 Oxovitisin A的稳定性、呈色特性及光谱性质 | 第33-46页 |
| 3.1 引言 | 第33页 |
| 3.2 材料与方法 | 第33-35页 |
| 3.2.1 材料与试剂 | 第33-34页 |
| 3.2.2 主要仪器设备 | 第34页 |
| 3.2.3 温度对Oxovitisin A稳定性的影响 | 第34页 |
| 3.2.4 光照对Oxovitisin A稳定性的影响 | 第34页 |
| 3.2.5 SO_2漂白对Oxovitisin A稳定性的影响 | 第34-35页 |
| 3.2.6 不同pH值下Oxovitisin A的紫外光谱特征和颜色特性 | 第35页 |
| 3.2.7 Oxovitisin A摩尔消光系数的研究 | 第35页 |
| 3.2.8 Oxovitisin A的荧光特性研究 | 第35页 |
| 3.3 结果与分析 | 第35-45页 |
| 3.3.1 温度对Oxovitisin A稳定性的影响 | 第35-37页 |
| 3.3.2 光照对Oxovitisin A稳定性的影响 | 第37-39页 |
| 3.3.3 SO_2漂白对Oxovitisin A稳定性的影响 | 第39-40页 |
| 3.3.4 不同pH值下Oxovitisin A的紫外光谱特征和颜色特性 | 第40-43页 |
| 3.3.5 Oxovitisin A摩尔消光系数的研究 | 第43页 |
| 3.3.6 Oxovitisin A的荧光特性研究 | 第43-45页 |
| 3.4 结论 | 第45-46页 |
| 4 Oxovitisin A的体外抗氧化活性研究 | 第46-57页 |
| 4.1 引言 | 第46页 |
| 4.2 材料与方法 | 第46-49页 |
| 4.2.1 材料与试剂 | 第46-47页 |
| 4.2.2 主要仪器及设备 | 第47页 |
| 4.2.3 Oxovitisin A清除脂溶性DPPH自由基能力的测定 | 第47页 |
| 4.2.4 Oxovitisin A清除水溶性ABTS+自由基能力的测定 | 第47-48页 |
| 4.2.5 FRAP法测定Oxovitisin A的还原能力 | 第48页 |
| 4.2.6 微弱化学发光法研究Oxovitisin A对含氧自由基的清除能力 | 第48-49页 |
| 4.3 结果与分析 | 第49-55页 |
| 4.3.1 Oxovitisin A清除脂溶性DPPH自由基能力的测定 | 第49-50页 |
| 4.3.2 Oxovitisin A清除水溶性ABTS+自由基能力的测定 | 第50页 |
| 4.3.4 FRAP法测定Oxovitisin A的还原能力 | 第50-52页 |
| 4.3.5 微弱化学发光法研究Oxovitisin A对含氧自由基的清除能力 | 第52-55页 |
| 4.4 结论 | 第55-57页 |
| 5 Oxovitisin A促乳腺癌细胞凋亡活性及其在人胃壁细胞中的转运吸收 | 第57-74页 |
| 5.1 前言 | 第57页 |
| 5.2 材料与方法 | 第57-64页 |
| 5.2.1 实验材料与试剂 | 第57-58页 |
| 5.2.2 实验仪器 | 第58-59页 |
| 5.2.3 MCF-7 细胞的培养 | 第59页 |
| 5.2.4 Oxovitisin A对MCF-7 细胞生长的抑制作用 | 第59-60页 |
| 5.2.5 Oxovitisin A对MCF-7 细胞凋亡因子的调控作用 | 第60页 |
| 5.2.6 Oxovitisin A在MCF-7 细胞模型中的定位成像研究 | 第60-61页 |
| 5.2.7 人胃癌上皮细胞(MKN-28)培养 | 第61页 |
| 5.2.8 MKN-28 细胞单层膜模型的建立和完整性验证 | 第61-62页 |
| 5.2.9 Oxovitisin A对MKN-28 细胞的毒性试验 | 第62页 |
| 5.2.10 Oxovitisin A在胃壁细胞模型中的转运吸收试验 | 第62-63页 |
| 5.2.11 转运试验样品的HPLC分析 | 第63页 |
| 5.2.12 稳定性分析 | 第63-64页 |
| 5.3 结果与分析 | 第64-72页 |
| 5.3.1 Oxovitisin A对MCF-7 细胞生长的抑制作用 | 第64-66页 |
| 5.3.2 Oxovitisin A及其前体花色苷和甲基吡喃花色苷调控MVF-7细胞凋亡因子水平分析 | 第66-68页 |
| 5.3.3 Oxovitisin A在MCF-7 细胞模型中的定位成像 | 第68-69页 |
| 5.3.4 MKN-28 细胞单层模型完整性验证 | 第69-70页 |
| 5.3.5 Oxovitisin A对MKN-28 细胞的生长抑制作用 | 第70-71页 |
| 5.3.6 Oxovitisin A在胃壁细胞模型中的转运吸收效率 | 第71-72页 |
| 5.4 结论 | 第72-74页 |
| 6 结论与展望 | 第74-76页 |
| 6.1 结论 | 第74-75页 |
| 6.2 展望 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-86页 |
| 致谢 | 第86-87页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第87页 |
