| 摘要 | 第6-7页 |
| abstract | 第7-8页 |
| 英文缩略表 | 第14-16页 |
| 第一章 引言 | 第16-22页 |
| 1.1 大米蛋白的营养与功能 | 第16页 |
| 1.1.1 大米蛋白的营养成分 | 第16页 |
| 1.1.2 大米蛋白的功能活性 | 第16页 |
| 1.2 食源性肽的生物活性 | 第16-18页 |
| 1.2.1 食物蛋白的消化吸收特性 | 第16-17页 |
| 1.2.2 食源性肽的功能活性 | 第17页 |
| 1.2.3 食源性肽的分离纯化与鉴定 | 第17-18页 |
| 1.3 血管细胞的生理功能与保护 | 第18-20页 |
| 1.3.1 血管细胞功能紊乱与动脉粥样硬化 | 第18-19页 |
| 1.3.2 食源肽的血管细胞保护作用研究 | 第19-20页 |
| 1.4 立题意义和研究内容 | 第20-22页 |
| 1.4.1 立题意义 | 第20页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第20-22页 |
| 第二章 大米α-球蛋白肽的分离鉴定与吸收验证 | 第22-32页 |
| 2.1 引言 | 第22页 |
| 2.2 材料 | 第22-23页 |
| 2.2.1 大米α-球蛋白消化产物 | 第22页 |
| 2.2.2 实验动物 | 第22页 |
| 2.2.3 主要试剂 | 第22-23页 |
| 2.2.4 主要仪器 | 第23页 |
| 2.3 实验方法 | 第23-24页 |
| 2.3.1 葡聚糖凝胶G-15层析分离混合肽 | 第23页 |
| 2.3.2 半制备高效液相色谱分离混合肽 | 第23页 |
| 2.3.3 液相-串联质谱分析肽组分 | 第23-24页 |
| 2.3.4 大米α-球蛋白肽的体内吸收评价 | 第24页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第24-31页 |
| 2.4.1 葡聚糖凝胶G-15层析分离混合肽 | 第24-25页 |
| 2.4.2 半制备高效液相色谱分离混合肽 | 第25-26页 |
| 2.4.3 液质谱分析组分结构 | 第26-28页 |
| 2.4.4 肽的体内吸收状况评价 | 第28-31页 |
| 2.5 本章小结 | 第31-32页 |
| 第三章 大米α-球蛋白肽的血管细胞保护作用研究 | 第32-44页 |
| 3.1 引言 | 第32页 |
| 3.2 材料 | 第32-33页 |
| 3.2.1 细胞及培养基 | 第32页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第32页 |
| 3.2.3 主要仪器 | 第32-33页 |
| 3.3 实验方法 | 第33-35页 |
| 3.3.1 细胞培养 | 第33页 |
| 3.3.2 TNF-α及肽对HUVEC细胞活力的影响 | 第33页 |
| 3.3.3 流式细胞术测定HUVEC细胞凋亡率 | 第33页 |
| 3.3.4 血清氧化及抗氧化酶指标的分析 | 第33-34页 |
| 3.3.5 WesternBlot测定胞浆中VCAM-1和ICAM-1水平 | 第34页 |
| 3.3.6 TNF-α及肽对VSMC增殖的影响 | 第34页 |
| 3.3.7 平板划痕测定细胞迁移水平 | 第34页 |
| 3.3.8 数据处理 | 第34-35页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第35-43页 |
| 3.4.1 TNF-α诱导HUVEC损伤模型的建立 | 第35页 |
| 3.4.2 肽对TNF-α诱导的HUVEC损伤的影响 | 第35-38页 |
| 3.4.3 肽对HUVEC中氧化应激水平的影响 | 第38页 |
| 3.4.4 肽对HUVEC的炎症因子的影响 | 第38-39页 |
| 3.4.5 TNF-α诱导VSMC增殖模型的建立 | 第39-40页 |
| 3.4.6 肽对TNF-α诱导的VSMC增殖的影响 | 第40-41页 |
| 3.4.7 肽对TNF-α诱导的VSMC迁移的影响 | 第41-43页 |
| 3.5 本章小结 | 第43-44页 |
| 第四章 大米α-球蛋白肽血管细胞保护作用的机制研究 | 第44-52页 |
| 4.1 引言 | 第44页 |
| 4.2 材料 | 第44-45页 |
| 4.2.1 细胞 | 第44页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第44-45页 |
| 4.2.3 主要仪器 | 第45页 |
| 4.3 实验方法 | 第45-46页 |
| 4.3.1 细胞培养 | 第45页 |
| 4.3.2 胞浆总蛋白的提取 | 第45页 |
| 4.3.3 核蛋白的提取 | 第45-46页 |
| 4.3.4 双荧光染色测定NF-κB核转位水平 | 第46页 |
| 4.3.5 WesternBlot测定核p65、胞浆IKKα、PDGF-BB蛋白水平 | 第46页 |
| 4.3.6 图像数据处理 | 第46页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第46-51页 |
| 4.4.1 肽对HUVEC中NF-κBp65蛋白的活化和核转位的影响 | 第46-48页 |
| 4.4.2 肽对HUVEC中NF-κB上游信号因子水平的影响 | 第48-49页 |
| 4.4.3 肽对HUVEC中细胞凋亡调控因子水平的影响 | 第49-50页 |
| 4.4.4 肽对VSMC中细胞增殖迁移调控因子水平的影响 | 第50-51页 |
| 4.5 本章小结 | 第51-52页 |
| 第五章 大米α-球蛋白肽的抗动脉粥样硬化功效评价 | 第52-59页 |
| 5.1 引言 | 第52页 |
| 5.2 材料 | 第52-53页 |
| 5.2.1 实验动物 | 第52页 |
| 5.2.2 主要试剂 | 第52页 |
| 5.2.3 主要仪器 | 第52-53页 |
| 5.3 实验方法 | 第53-54页 |
| 5.3.1 AS 模型建立及动物饲养 | 第53页 |
| 5.3.2 小鼠主动脉苏丹Ⅳ染色观察 | 第53页 |
| 5.3.3 小鼠主动脉根部HE染色及石蜡切片观察 | 第53页 |
| 5.3.4 ELISA测定小鼠主要脂质代谢因子水平 | 第53-54页 |
| 5.3.5 ELISA测定小鼠血清氧化应激因子与炎症因子水平 | 第54页 |
| 5.3.6 图像数据处理 | 第54页 |
| 5.4 结果与讨论 | 第54-58页 |
| 5.4.1 肽对ApoE~(-/-)小鼠动脉粥样硬化斑块面积的影响 | 第54-56页 |
| 5.4.2 肽对ApoE~(-/-)小鼠脂质代谢的影响 | 第56-57页 |
| 5.4.3 肽对ApoE~(-/-)小鼠氧化应激与炎症因子水平的影响 | 第57-58页 |
| 5.5 本章小结 | 第58-59页 |
| 第六章 结论与展望 | 第59-60页 |
| 6.1 结论 | 第59页 |
| 6.2 展望 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 作者简历 | 第66页 |
