| 摘要 | 第7-9页 |
| ABSTRACT | 第9-11页 |
| 中英文对照及英文缩略词表 | 第14-16页 |
| 第一章 综述 | 第16-28页 |
| 1.1 枸杞研究概况 | 第16-23页 |
| 1.1.1 枸杞子概况 | 第16-17页 |
| 1.1.2 枸杞化学成分研究进展 | 第17-20页 |
| 1.1.3 枸杞的生物活性研究 | 第20-23页 |
| 1.2 枸杞多糖修复肝损伤的研究进展 | 第23-27页 |
| 1.2.1 肝损伤的分类及常见的肝损伤模型 | 第23-25页 |
| 1.2.2 枸杞多糖修复化学性肝损伤的研究进展 | 第25-27页 |
| 1.3 本研究的目的、意义及主要内容 | 第27-28页 |
| 1.3.1 本研究的目的、意义 | 第27页 |
| 1.3.2 本研究的主要内容 | 第27-28页 |
| 第二章 枸杞多糖修复化学性肝损伤的生物活性研究 | 第28-38页 |
| 2.1 引言 | 第28-29页 |
| 2.2 实验材料与方法 | 第29页 |
| 2.2.1 实验动物 | 第29页 |
| 2.2.2 实验试剂和实验仪器 | 第29页 |
| 2.3 实验方法 | 第29-31页 |
| 2.3.1 主要溶液的配制 | 第29-30页 |
| 2.3.2 动物分组 | 第30页 |
| 2.3.3 动物处理 | 第30-31页 |
| 2.3.4 大鼠一般毒性表现 | 第31页 |
| 2.3.5 大鼠肝组织的病理学改变 | 第31页 |
| 2.3.6 大鼠血清中肝功能相关指标检测 | 第31页 |
| 2.3.7 数据处理 | 第31页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第31-36页 |
| 2.4.1 实验动物的一般表现 | 第31页 |
| 2.4.2 枸杞多糖对CCl4染毒大鼠肝脏病理学变化的影响 | 第31-32页 |
| 2.4.3 枸杞多糖对CCl4染毒大鼠体重的影响 | 第32-33页 |
| 2.4.4 枸杞多糖对CCl4染毒大鼠肝脏脏器系数的影响 | 第33-35页 |
| 2.4.5 枸杞多糖对CCl4染毒大鼠血清蛋白浓度异常改变的逆转作用 | 第35-36页 |
| 2.4.6 枸杞多糖对CCl4染毒大鼠血清肝功能相关酶活力的影响 | 第36页 |
| 2.5 小结 | 第36-38页 |
| 第三章 枸杞多糖修复化学性肝损伤活性的筛选 | 第38-51页 |
| 3.1 引言 | 第38页 |
| 3.2 实验试剂和仪器 | 第38-39页 |
| 3.3 实验方法 | 第39-43页 |
| 3.3.1 枸杞多糖的分级醇沉 | 第39页 |
| 3.3.2 LBP1~LBP4的含量测定 | 第39-41页 |
| 3.3.3 LBP1~LBP4清除自由基的测定 | 第41-43页 |
| 3.3.4 数据处理 | 第43页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第43-49页 |
| 3.4.1 LBP1~LBP4各含量的测定 | 第43-46页 |
| 3.4.2 LBP1~LBP4清除自由基的考察 | 第46-49页 |
| 3.5 小结 | 第49-51页 |
| 第四章 枸杞多糖修复化学性肝损伤的物质基础研究 | 第51-62页 |
| 4.1 引言 | 第51-52页 |
| 4.2 实验试剂和仪器 | 第52页 |
| 4.3 实验方法 | 第52-54页 |
| 4.3.1 HPLC-DAD-ELSD法分析枸杞多糖 | 第52页 |
| 4.3.2 HPLC-DPPH在线联用技术评价枸杞多糖活性 | 第52-53页 |
| 4.3.3 LBP2分离纯化 | 第53页 |
| 4.3.4 清除自由基活性评价 | 第53-54页 |
| 4.3.5 SephadexG-100凝胶色谱法进一步纯化 | 第54页 |
| 4.3.6 多糖的纯度鉴定 | 第54页 |
| 4.3.7 数据处理 | 第54页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第54-61页 |
| 4.4.1 HPLC-DAD-ELSD法分析枸杞多糖 | 第54-55页 |
| 4.4.2 HPLC-DPPH在线联用技术评价枸杞多糖活性 | 第55-56页 |
| 4.4.3 LBP2的分离纯化 | 第56-58页 |
| 4.4.4 清除自由基活性评价 | 第58-60页 |
| 4.4.5 SephadexG-100柱层析纯化 | 第60-61页 |
| 4.5 小结 | 第61-62页 |
| 总结与展望 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-74页 |
| 致谢 | 第74-75页 |
| 附录A 攻读硕士期间所发表的论文及成果 | 第75页 |
