| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 目录 | 第10-13页 |
| 缩略语表 | 第13-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-39页 |
| 1.1 晚期糖基化终末产物的研究进展 | 第15-23页 |
| 1.1.1 AGEs的生化特性 | 第15-16页 |
| 1.1.2 AGEs的形成机理 | 第16-18页 |
| 1.1.3 AGEs的致病机理 | 第18-20页 |
| 1.1.4 AGEs的分析方法 | 第20-21页 |
| 1.1.5 AGEs抑制剂的研究与开发 | 第21-23页 |
| 1.2 食源性晚期糖基化终末产物对人体健康的影响 | 第23-25页 |
| 1.2.1 dAGEs的代谢 | 第23-24页 |
| 1.2.2 dAGEs与人体健康的关系 | 第24-25页 |
| 1.3 食源性CML的分析方法 | 第25-27页 |
| 1.4 食源性CML形成机理的研究 | 第27-30页 |
| 1.5 食品中CML的暴露量 | 第30-32页 |
| 1.6 食源性CML抑制途径的研究 | 第32-34页 |
| 1.6.1 优化食品加工工艺条件 | 第33页 |
| 1.6.2 添加抗氧化剂 | 第33-34页 |
| 1.6.3 添加还原剂硼氢化钠 | 第34页 |
| 1.7 植物多酚类抗氧化剂 | 第34-36页 |
| 1.7.1 竹叶抗氧化物 | 第35页 |
| 1.7.2 茶多酚 | 第35页 |
| 1.7.3 迷迭香提取物 | 第35-36页 |
| 1.8 立题依据和主要研究内容 | 第36-39页 |
| 1.8.1 立题依据与目的意义 | 第37页 |
| 1.8.2 主要研究内容 | 第37-38页 |
| 1.8.3 技术路线 | 第38-39页 |
| 第二章 食品中CML和CEL同步检测方法的建立 | 第39-59页 |
| 2.1 试验原料、材料与设备 | 第39-40页 |
| 2.1.1 原材料 | 第39页 |
| 2.1.2 化学药品与试剂 | 第39-40页 |
| 2.1.3 试验设备与耗材 | 第40页 |
| 2.2 试验方法 | 第40-44页 |
| 2.2.1 CML和CEL同步检测方法的建立 | 第40-42页 |
| 2.2.1.1 样品预处理方法 | 第40-41页 |
| 2.2.1.2 UPLC-MS/MS的分析检测条件 | 第41-42页 |
| 2.2.2 UPLC-MS/MS法同步检测CML和CEL的方法学验证 | 第42-43页 |
| 2.2.2.1 线性关系 | 第42-43页 |
| 2.2.2.2 检测限和定量限 | 第43页 |
| 2.2.2.3 准确度 | 第43页 |
| 2.2.2.4 精密度 | 第43页 |
| 2.2.3 基质效应的评价 | 第43-44页 |
| 2.2.4 UPLC-MS/MS验证实际体系中CML和CEL的含量 | 第44页 |
| 2.2.5 数据分析 | 第44页 |
| 2.3 结果与分析 | 第44-56页 |
| 2.3.1 质谱参数的优化 | 第44-47页 |
| 2.3.2 液相条件的优化 | 第47-48页 |
| 2.3.3 衍生化反应的参数优化 | 第48-50页 |
| 2.3.4 UPLC-MS/MS法同步检测CML和CEL的方法学验证 | 第50-52页 |
| 2.3.4.1 线性关系、检测限和定量限 | 第50-51页 |
| 2.3.4.2 准确度 | 第51页 |
| 2.3.4.3 精密度 | 第51-52页 |
| 2.3.5 基质效应 | 第52页 |
| 2.3.6 UPLC-MS/MS方法检测食品中CML和CEL的含量 | 第52-56页 |
| 2.4 讨论 | 第56-58页 |
| 2.4.1 分析比较不同食品中CML和CEL的含量 | 第56-58页 |
| 2.4.2 FMOC-Cl衍生化反应的选择 | 第58页 |
| 2.5 本章小结 | 第58-59页 |
| 第三章 植物多酚对可可豆烘焙过程中CML形成的抑制作用 | 第59-68页 |
| 3.1 材料、试剂与设备 | 第60页 |
| 3.1.1 原材料 | 第60页 |
| 3.1.2 化学药品与试剂 | 第60页 |
| 3.1.3 试验设备与耗材 | 第60页 |
| 3.2 试验方法 | 第60-62页 |
| 3.2.1 AOB-w抑制熟可可豆中CML形成的工艺参数优化 | 第60-61页 |
| 3.2.1.1 生可可豆浸渍时间的优化 | 第60-61页 |
| 3.2.1.2 生可可豆的浸渍处理 | 第61页 |
| 3.2.1.3 测定熟可可豆的水分含量、豆肉以及豆壳比例 | 第61页 |
| 3.2.1.4 熟可可豆中的CML含量测定 | 第61页 |
| 3.2.2 AOB-w、TP-w和RE-w对熟可可豆中CML的抑制作用 | 第61-62页 |
| 3.2.2.1 AOB-w、TP-w和RE-w浸渍液的配制及试验分组 | 第61-62页 |
| 3.2.2.2 生可可豆的加工 | 第62页 |
| 3.2.3 数据分析 | 第62页 |
| 3.3 结果与分析 | 第62-65页 |
| 3.3.1 AOB-w抑制熟可可豆中CML形成的工艺参数优化 | 第62-63页 |
| 3.3.1.1 生可可豆浸渍时间的优化 | 第62-63页 |
| 3.3.1.2 熟可可豆的水分含量以及豆肉得率的测定 | 第63页 |
| 3.3.2 AOB-w、TP-w和RE-w对熟可可豆中CML形成的抑制作用 | 第63-65页 |
| 3.4 讨论 | 第65-67页 |
| 3.4.1 浸渍时间对抑制熟可可豆中CML形成的影响 | 第65-66页 |
| 3.4.2 不同植物多酚对熟可可豆中CML的抑制作用 | 第66-67页 |
| 3.5 本章小结 | 第67-68页 |
| 第四章 CML形成的脂肪酸-赖氨酸模式反应体系的建立 | 第68-85页 |
| 4.1 材料、试剂与设备 | 第68-69页 |
| 4.1.1 化学药品与试剂 | 第68-69页 |
| 4.1.2 试验设备与耗材 | 第69页 |
| 4.2 试验方法 | 第69-72页 |
| 4.2.1 脂肪酸-赖氨酸模式反应体系的建立 | 第69-70页 |
| 4.2.1.1 不同的脂肪酸-赖氨酸模式反应体系 | 第69页 |
| 4.2.1.2 反应终产物的预处理 | 第69-70页 |
| 4.2.1.3 UPLC-MS/MS检测的液相和质谱条件 | 第70页 |
| 4.2.2 CML在模式反应体系中的形成规律研究 | 第70-71页 |
| 4.2.3 响应面分析优化模式反应体系的参数 | 第71-72页 |
| 4.3 结果与分析 | 第72-82页 |
| 4.3.1 食品模式反应体系中CML的形成规律研究 | 第72-75页 |
| 4.3.1.1 温度对CML形成的影响 | 第72-73页 |
| 4.3.1.2 时间对CML形成的影响 | 第73-74页 |
| 4.3.1.3 底物量对CML形成的影响 | 第74页 |
| 4.3.1.4 底物的摩尔比对CML形成的影响 | 第74-75页 |
| 4.3.2 响应面分析优化模式反应体系中CML形成的反应参数 | 第75-82页 |
| 4.4 讨论 | 第82-83页 |
| 4.5 本章小结 | 第83-85页 |
| 第五章 植物多酚抑制模式反应体系中CML形成的动力学研究 | 第85-100页 |
| 5.1 材料、试剂与设备 | 第86-87页 |
| 5.1.1 原材料 | 第86-87页 |
| 5.1.2 化学药品与试剂 | 第87页 |
| 5.1.3 试验设备与耗材 | 第87页 |
| 5.2 试验方法 | 第87-89页 |
| 5.2.1 AOB、TP和RE在模式反应体系中抑制CML形成的研究 | 第87-88页 |
| 5.2.2 CML形成/消除动力学模型的构建 | 第88-89页 |
| 5.2.3 AOB、TP和RE抑制模式反应体系中CML形成的动力学研究 | 第89页 |
| 5.2.4 数据分析与动力学模型评价 | 第89页 |
| 5.3 结果与分析 | 第89-97页 |
| 5.3.1 不同植物多酚对模式反应体系中CML形成的抑制作用 | 第89-92页 |
| 5.3.2 AOB、TP和RE抑制模式反应体系中CML的动力学研究 | 第92-97页 |
| 5.4 讨论 | 第97-99页 |
| 5.4.1 AOB、TP和RE抑制模式反应体系中CML的形成研究 | 第97-98页 |
| 5.4.2 AOB、TP和RE抑制模式反应体系中CML的动力学过程评价 | 第98-99页 |
| 5.5 本章小结 | 第99-100页 |
| 结论与展望 | 第100-102页 |
| 结论 | 第100-101页 |
| 主要创新点 | 第101页 |
| 展望 | 第101-102页 |
| 参考文献 | 第102-112页 |
| 攻读博士学位期间所取得的科研成果 | 第112-113页 |
| 致谢 | 第113页 |
