| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5-6页 |
| 1 前言 | 第9-20页 |
| 1.1 酚类物质的研究概述 | 第9-10页 |
| 1.1.1 酚类物质的定义与分类 | 第9页 |
| 1.1.2 酚类物质的结构鉴定 | 第9-10页 |
| 1.1.3 水稻酚类物质的生物活性 | 第10页 |
| 1.2 抗氧化作用 | 第10-12页 |
| 1.2.1 抗氧化作用与自由基的关系 | 第11页 |
| 1.2.2 自由基对生物体的影响 | 第11页 |
| 1.2.3 天然抗氧化剂-酚类化合物 | 第11-12页 |
| 1.2.4 抗氧化作用与肥胖症的关系 | 第12页 |
| 1.3 肥胖的概述 | 第12-15页 |
| 1.3.1 当前肥胖的治疗方法 | 第13页 |
| 1.3.2 治疗肥胖的作用机制 | 第13-15页 |
| 1.4 脂肪生成 | 第15-18页 |
| 1.4.1 成脂分化细胞模型 | 第16-17页 |
| 1.4.2 成脂分化的体外诱导方案 | 第17-18页 |
| 1.4.3 多酚类化合物及其抑制脂肪生成活性 | 第18页 |
| 1.5 本文的研究内容及意义 | 第18-20页 |
| 1.5.1 主要研究内容 | 第19页 |
| 1.5.2 研究意义 | 第19-20页 |
| 2 材料与方法 | 第20-36页 |
| 2.1 实验材料与仪器设备 | 第20-23页 |
| 2.1.1 实验细胞 | 第20页 |
| 2.1.2 主要实验试剂 | 第20-21页 |
| 2.1.3 主要实验设备 | 第21-23页 |
| 2.2 实验方法 | 第23-36页 |
| 2.2.1 样品制备 | 第23页 |
| 2.2.2 总酚含量测定 | 第23页 |
| 2.2.3 黄酮含量测定 | 第23-24页 |
| 2.2.4 抗氧化能力测定 | 第24-25页 |
| 2.2.5 样品成分种类实验 | 第25页 |
| 2.2.6 高效液相色谱分析 | 第25-26页 |
| 2.2.7 细胞培养与诱导分化 | 第26-28页 |
| 2.2.8 MTT法检测细胞活力 | 第28页 |
| 2.2.9 细胞中脂代谢相关基因mRNA转录水平的测定 | 第28-34页 |
| 2.2.10 Western blot测定PPARγ蛋白表达 | 第34-35页 |
| 2.2.11 数据处理 | 第35-36页 |
| 3 结果与讨论 | 第36-55页 |
| 3.1 提取率的比较 | 第36页 |
| 3.2 提取物中总酚含量 | 第36-38页 |
| 3.2.1 没食子酸标准曲线 | 第36-37页 |
| 3.2.2 样品中总酚含量 | 第37-38页 |
| 3.3 提取物中黄酮含量 | 第38-40页 |
| 3.3.1 芦丁标准曲线 | 第38-39页 |
| 3.3.2 样品中黄酮含量 | 第39-40页 |
| 3.4 提取物抗氧化测定结果 | 第40-42页 |
| 3.4.1 DPPH·自由基清除能力 | 第40页 |
| 3.4.2 ABTS自由基清除能力 | 第40-41页 |
| 3.4.3 SOR自由基清除能力 | 第41-42页 |
| 3.5 样品成分种类实验结果分析 | 第42-45页 |
| 3.6 高效液相色谱法测定提取物成分分析 | 第45-46页 |
| 3.6.1 多酚标准品的HPLC图谱 | 第45页 |
| 3.6.2 色米提取物的组成和含量分析 | 第45-46页 |
| 3.7 细胞成脂分化 | 第46-48页 |
| 3.7.1 间充质干细胞的传代培养 | 第46-47页 |
| 3.7.2 MTT法测定细胞活力结果 | 第47页 |
| 3.7.3 油红O染色结果 | 第47-48页 |
| 3.8 细胞中脂相关基因mRNA转录水平的影响 | 第48-52页 |
| 3.8.1 总RNA纯度的鉴定 | 第48-49页 |
| 3.8.2 细胞提取总RNA完整性的鉴定 | 第49页 |
| 3.8.3 实时荧光定量PCR结果 | 第49-52页 |
| 3.9 Western Blot测定PPARγ蛋白的表达结果 | 第52-55页 |
| 4 结论 | 第55-56页 |
| 5 展望 | 第56-57页 |
| 6 参考文献 | 第57-63页 |
| 7 攻读硕士学位期间论文发表情况 | 第63-64页 |
| 8 致谢 | 第64页 |
