| 摘要 | 第4-5页 |
| ABSTRACT | 第5页 |
| 1 前言 | 第9-19页 |
| 1.1 糖尿病概述 | 第9-11页 |
| 1.1.1 糖尿病发病机理 | 第9-10页 |
| 1.1.2 糖尿病病理机理 | 第10页 |
| 1.1.3 糖尿病并发症 | 第10-11页 |
| 1.2 糖尿病与脂代谢 | 第11-12页 |
| 1.2.1 生脂作用减弱 | 第11-12页 |
| 1.2.2 脂解作用增强 | 第12页 |
| 1.2.3 血脂异常 | 第12页 |
| 1.3 糖尿病与氧化应激 | 第12-13页 |
| 1.3.1 氧化应激机制 | 第12-13页 |
| 1.4 药物与糖尿病 | 第13-15页 |
| 1.4.1 西药与糖尿病 | 第13-14页 |
| 1.4.2 中药与糖尿病 | 第14-15页 |
| 1.5 荞麦壳与糖尿病 | 第15-17页 |
| 1.5.1 荞麦壳简介 | 第15-16页 |
| 1.5.2 荞麦壳的生理功能 | 第16-17页 |
| 1.6 本文的研究内容及意义 | 第17-19页 |
| 1.6.1 主要研究内容 | 第17-18页 |
| 1.6.2 研究意义 | 第18-19页 |
| 2 材料与方法 | 第19-41页 |
| 2.1 实验材料与仪器 | 第19-22页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第19页 |
| 2.1.2 实验细胞 | 第19页 |
| 2.1.3 实验受试物 | 第19页 |
| 2.1.4 动物实验饲料 | 第19页 |
| 2.1.5 主要试剂 | 第19-21页 |
| 2.1.6 主要仪器 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-41页 |
| 2.2.1 荞麦壳提取物的制备 | 第22页 |
| 2.2.2 荞麦壳提取物生物活性的分析 | 第22-24页 |
| 2.2.3 实验动物模型的建立及分组 | 第24页 |
| 2.2.4 动物实验过程以及血清中各指标的检测 | 第24-27页 |
| 2.2.5 大鼠肝脏糖脂代谢相关基因mRNA转录水平的测定 | 第27-34页 |
| 2.2.6 细胞实验过程以及各指标的测定 | 第34-36页 |
| 2.2.7 细胞脂代谢相关基因mRNA转录水平的测定 | 第36-40页 |
| 2.2.8 数据处理 | 第40-41页 |
| 3 结果与讨论 | 第41-58页 |
| 3.1 受试物的性质分析 | 第41-42页 |
| 3.1.1 受试物生物活性成分的分析 | 第41-42页 |
| 3.1.2 受试物的抗氧化能力分析 | 第42页 |
| 3.2 大鼠状态的比较 | 第42-43页 |
| 3.3 动物实验过程和血清各指标的检测 | 第43-47页 |
| 3.3.1 受试物对糖尿病大鼠体重的影响 | 第43页 |
| 3.3.2 受试物对糖尿病大鼠血糖的影响 | 第43-44页 |
| 3.3.3 受试物对糖尿病大鼠饮水量的影响 | 第44-45页 |
| 3.3.4 受试物对糖尿病大鼠血清胰岛素(INS)的影响 | 第45页 |
| 3.3.5 受试物对糖尿病大鼠血清TCH、TG、HDL-c和LDL-c的影响 | 第45-46页 |
| 3.3.6 受试物对糖尿病大鼠血清氧化应激指标的影响 | 第46-47页 |
| 3.4 受试物对大鼠肝脏组织糖脂相关基因mRNA转录水平的影响 | 第47-53页 |
| 3.4.1 提取大鼠肝脏总RNA纯度的鉴定 | 第48页 |
| 3.4.2 提取大鼠肝脏总RNA完整性的鉴定 | 第48页 |
| 3.4.3 扩增产物的鉴定 | 第48-49页 |
| 3.4.4 实时荧光定量PCR结果 | 第49-53页 |
| 3.5 细胞实验过程和各指标的分析 | 第53-55页 |
| 3.5.1 MTT法测定细胞活力结果分析 | 第53-54页 |
| 3.5.2 油红O染色法定量内脂滴结果分析 | 第54-55页 |
| 3.6 细胞中脂相关基因mRNA转录水平的影响 | 第55-58页 |
| 3.6.1 细胞组织总RNA完整性的鉴定 | 第55页 |
| 3.6.2 实时荧光定量PCR结果 | 第55-58页 |
| 4 结论 | 第58-60页 |
| 5 展望 | 第60-61页 |
| 6 参考文献 | 第61-67页 |
| 7 攻读硕士学位期间论文发表情况 | 第67-68页 |
| 8 致谢 | 第68页 |
