酶解虾副产物制备抗氧化肽
| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 英文缩略语索引 | 第8-12页 |
| 第一章 绪论 | 第12-21页 |
| 1.1 虾副产物资源现状 | 第12页 |
| 1.2 虾副产物的利用展望 | 第12-13页 |
| 1.3 氧化反应 | 第13-14页 |
| 1.4 抗氧化剂 | 第14-15页 |
| 1.5 抗氧化肽的研究进展 | 第15-20页 |
| 1.5.1 抗氧化肽 | 第15-16页 |
| 1.5.2 抗氧化活性评价 | 第16-17页 |
| 1.5.3 抗氧化肽分离纯化 | 第17-18页 |
| 1.5.4 定量构效关系与抗氧化活性的研究 | 第18-20页 |
| 1.6 研究目的与内容 | 第20-21页 |
| 第二章 虾副产物酶解工艺 | 第21-30页 |
| 2.1 引言 | 第21页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第21-22页 |
| 2.2.1 试验材料 | 第21-22页 |
| 2.2.2 仪器与设备 | 第22页 |
| 2.3 试验方法 | 第22-24页 |
| 2.3.1 样品前处理 | 第22页 |
| 2.3.2 虾副产物总蛋白最佳提取时间的确定 | 第22-23页 |
| 2.3.3 水解度的确定 | 第23-24页 |
| 2.3.4 α-胰凝乳蛋白酶酶解条件优化 | 第24页 |
| 2.3.5 嗜热菌蛋白酶酶解条件优化 | 第24页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第24-29页 |
| 2.4.1 酶的选取 | 第24-25页 |
| 2.4.2 虾副产物总蛋白最佳提取时间的确定 | 第25-27页 |
| 2.4.3 两步酶解条件优化 | 第27-29页 |
| 2.5 小结 | 第29-30页 |
| 第三章 抗氧化肽的分离鉴定 | 第30-50页 |
| 3.1 引言 | 第30-31页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第31-32页 |
| 3.2.1 试剂与材料 | 第31页 |
| 3.2.2 仪器与设备 | 第31-32页 |
| 3.3 试验方法 | 第32-36页 |
| 3.3.1 多肽含量测定 | 第32页 |
| 3.3.2 抗氧化活性测定 | 第32-33页 |
| 3.3.3 透析 | 第33页 |
| 3.3.4 凝胶层析 | 第33-34页 |
| 3.3.5 离子交换色谱 | 第34页 |
| 3.3.6 RP-HPLC分离 | 第34-35页 |
| 3.3.7 质谱分析 | 第35页 |
| 3.3.8 多肽的合成 | 第35页 |
| 3.3.9 胃肠道消化模拟 | 第35-36页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第36-48页 |
| 3.4.1 多肽浓度及抗氧化活性的测定 | 第36-38页 |
| 3.4.2 透析后不同截留分子量的抗氧化活性 | 第38-39页 |
| 3.4.3 凝胶过滤层析 | 第39-41页 |
| 3.4.4 离子交换色谱 | 第41-43页 |
| 3.4.5 RP-HPLC | 第43-45页 |
| 3.4.6 抗氧化组分得率 | 第45-46页 |
| 3.4.7 质谱分析 | 第46-47页 |
| 3.4.8 多肽的合成及活性测定 | 第47-48页 |
| 3.4.9 胃肠道模拟 | 第48页 |
| 3.5 本章小结 | 第48-50页 |
| 第四章 结论与展望 | 第50-53页 |
| 4.1 结论 | 第50-51页 |
| 4.2 研究展望 | 第51-53页 |
| 参考文献 | 第53-61页 |
| 附录 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62-63页 |
| 攻读硕士学位期间发表的学术论文 | 第63页 |
