摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
缩略符号对照表 | 第8-13页 |
第一章 绪论 | 第13-31页 |
1.1 概述 | 第13-14页 |
1.2 乳酸菌的生长抑制因素 | 第14-18页 |
1.2.1 乳酸菌生长的主要抑制因素 | 第14-16页 |
1.2.2 乳酸菌生长动力学模型简介 | 第16-18页 |
1.3 乳酸菌的高密度培养方法 | 第18-24页 |
1.3.1 分批培养 | 第18-19页 |
1.3.2 恒pH补料分批培养 | 第19-20页 |
1.3.3 透析培养 | 第20-21页 |
1.3.4 膜滤循环培养 | 第21-22页 |
1.3.5 固定细胞培养 | 第22-23页 |
1.3.6 诱导有氧呼吸培养 | 第23-24页 |
1.3.7 其它 | 第24页 |
1.4 乳酸菌的冻干存活影响因素 | 第24-30页 |
1.4.1 乳酸菌冻干损伤的机制 | 第25-26页 |
1.4.2 影响乳酸菌冻干存活的因素 | 第26-29页 |
1.4.3 乳酸菌冻干粉制备现状 | 第29-30页 |
1.5 立题意义与研究内容 | 第30-31页 |
1.5.1 立题意义 | 第30页 |
1.5.2 主要研究内容 | 第30-31页 |
第二章 同型发酵乳杆菌的主要生长抑制因素及规律 | 第31-47页 |
2.1 前言 | 第31页 |
2.2 实验材料与设备 | 第31-32页 |
2.2.1 主要试剂 | 第31页 |
2.2.2 菌株 | 第31-32页 |
2.2.3 培养基 | 第32页 |
2.2.4 主要仪器和设备 | 第32页 |
2.3 实验方法 | 第32-35页 |
2.3.1 种子液的制备 | 第32页 |
2.3.2 同型发酵乳杆菌的分批培养 | 第32-33页 |
2.3.3 同型发酵乳杆菌的恒pH(7.0)补料分批培养 | 第33页 |
2.3.4 酸根在pH值 7.0 条件下对同型发酵乳杆菌的抑制 | 第33页 |
2.3.5 发酵液中葡萄糖的测定 | 第33页 |
2.3.6 发酵液中氨基酸态氮的测定 | 第33-34页 |
2.3.7 发酵液中乳酸根的测定 | 第34页 |
2.3.8 发酵液渗透压的测定 | 第34页 |
2.3.9 生物量的测定 | 第34页 |
2.3.10 葡萄糖代谢成乳酸的转化率 | 第34页 |
2.3.11 同型发酵乳杆菌的自动反馈补料培养 | 第34-35页 |
2.3.12 数据统计与分析 | 第35页 |
2.4 结果与讨论 | 第35-45页 |
2.4.1 同型发酵乳杆菌分批培养的主要抑制因素 | 第35-37页 |
2.4.2 同型发酵乳杆菌的恒pH(7.0)补料分批培养 | 第37-38页 |
2.4.3 酸根在中性环境下对同型发酵乳杆菌的抑制 | 第38-39页 |
2.4.4 同型发酵乳杆菌恒pH(7.0)补料分批培养的主要抑制因素 | 第39-40页 |
2.4.5 同型发酵乳杆菌最高生物量的规律 | 第40-42页 |
2.4.6 最高生物量的规律结合自动反馈补料在乳杆菌培养中的应用 | 第42-45页 |
2.5 本章小结 | 第45-47页 |
第三章 双歧杆菌的主要生长抑制因素及规律 | 第47-61页 |
3.1 前言 | 第47页 |
3.2 实验材料与设备 | 第47-48页 |
3.2.1 主要试剂 | 第47页 |
3.2.2 菌株 | 第47页 |
3.2.3 培养基 | 第47-48页 |
3.2.4 主要仪器和设备 | 第48页 |
3.3 实验方法 | 第48-50页 |
3.3.1 种子液的制备 | 第48页 |
3.3.2 双歧杆菌的分批培养 | 第48页 |
3.3.3 双歧杆菌的恒pH(7.0)补料分批培养 | 第48-49页 |
3.3.4 酸根在pH值 7.0 条件下对双歧杆菌的抑制 | 第49页 |
3.3.5 发酵液中葡萄糖的测定 | 第49页 |
3.3.6 发酵液中氨基酸态氮的测定 | 第49页 |
3.3.7 发酵液中总酸根的测定 | 第49页 |
3.3.8 发酵液渗透压的测定 | 第49页 |
3.3.9 生物量的测定 | 第49页 |
3.3.10 葡萄糖代谢成酸的转化率 | 第49页 |
3.3.11 双歧杆菌的自动反馈补料培养 | 第49-50页 |
3.3.12 数据统计与分析 | 第50页 |
3.4 结果与讨论 | 第50-60页 |
3.4.1 双歧杆菌分批培养的主要抑制因素 | 第50-52页 |
3.4.2 双歧杆菌的恒pH(7.0)补料分批培养 | 第52-54页 |
3.4.3 酸根在中性环境下对双歧杆菌的抑制 | 第54页 |
3.4.4 双歧杆菌恒pH(7.0)补料分批培养的主要抑制因素 | 第54-55页 |
3.4.5 双歧杆菌最高生物量的规律 | 第55-58页 |
3.4.6 最高生物量的规律结合自动反馈补料在双歧杆菌培养中的应用 | 第58-60页 |
3.5 本章小结 | 第60-61页 |
第四章 基于同型发酵乳杆菌生长抑制规律的乳酸菌离子交换高密度培养法 | 第61-73页 |
4.1 前言 | 第61页 |
4.2 实验材料与设备 | 第61-62页 |
4.2.1 主要试剂 | 第61-62页 |
4.2.2 菌株 | 第62页 |
4.2.3 培养基 | 第62页 |
4.2.4 主要仪器和设备 | 第62页 |
4.3 实验方法 | 第62-66页 |
4.3.1 种子液的制备 | 第62页 |
4.3.2 底物成分的优化 | 第62页 |
4.3.3 阴离子交换树脂的预处理及转型 | 第62-63页 |
4.3.4 阴离子交换树脂在 37℃条件下对乳酸的吸附容量的测定 | 第63页 |
4.3.5 阴离子交换树脂在 37℃条件下对葡萄糖和氨基酸的选择性分析 | 第63页 |
4.3.6 离子交换生物反应器的设计 | 第63-64页 |
4.3.7 氢氧化钠作为中和剂的补料分批培养L. plantarum CCFM 8610 | 第64页 |
4.3.8 离子交换生物反应器培养L. plantarum CCFM 8610 | 第64-65页 |
4.3.9 渗透压作为唯一抑制因素的生长动力学 | 第65页 |
4.3.10 数据统计与分析 | 第65-66页 |
4.4 结果与讨论 | 第66-72页 |
4.4.1 底物成分的优化 | 第66-67页 |
4.4.2 L. plantarum CCFM 8610的渗透压抑制动力学 | 第67-68页 |
4.4.3 阴离子交换树脂的选型及初筛 | 第68-69页 |
4.4.4 阴离子交换树脂对底物成分的选择性分析 | 第69-71页 |
4.4.5 离子交换法高密度培养L. plantarum CCFM 8610 | 第71-72页 |
4.5 本章小结 | 第72-73页 |
第五章 酸对乳酸菌冻干存活的影响 | 第73-87页 |
5.1 前言 | 第73页 |
5.2 实验材料与设备 | 第73-74页 |
5.2.1 主要试剂 | 第73-74页 |
5.2.2 菌株 | 第74页 |
5.2.3 培养基 | 第74页 |
5.2.4 主要仪器和设备 | 第74页 |
5.3 实验方法 | 第74-77页 |
5.3.1 乳酸菌的活化与培养 | 第74页 |
5.3.2 乳酸菌的冻干 | 第74-75页 |
5.3.3 冻干后样品的活菌计数及pH值测定 | 第75页 |
5.3.4 乳酸菌在不同温度下产酸速率的测定 | 第75页 |
5.3.5 乳酸菌的冷冻及冻干存活率的测定 | 第75页 |
5.3.6 无细胞提取物的制备 | 第75-76页 |
5.3.7 ATP酶的测定 | 第76页 |
5.3.8 β-半乳糖苷酶的测定 | 第76页 |
5.3.9 乳酸脱氢酶的测定 | 第76页 |
5.3.10 细胞膜流动性的测定 | 第76-77页 |
5.3.11 细胞大小的测定 | 第77页 |
5.3.12 数据统计与分析 | 第77页 |
5.4 结果与讨论 | 第77-86页 |
5.4.1 实验组A冻干后乳酸菌的存活率及样品pH值 | 第77-78页 |
5.4.2 实验组B冻干后乳酸菌的存活率及样品pH值 | 第78页 |
5.4.3 不同温度对产酸速率的影响 | 第78-80页 |
5.4.4 酸对冷冻及冻干存活率的影响 | 第80页 |
5.4.5 酸对冷冻及冻干细胞ATP酶的影响 | 第80-81页 |
5.4.6 酸对冷冻及冻干细胞β-半乳糖苷酶的影响 | 第81-82页 |
5.4.7 酸对冷冻及冻干细胞乳酸脱氢酶的影响 | 第82-85页 |
5.4.8 酸对冷冻及冻干细胞膜完整性和流动性的影响 | 第85页 |
5.4.9 不同乳酸菌以不同比例添加保护剂的冻干存活率 | 第85页 |
5.4.10 最适活菌量与保护剂量的规律 | 第85-86页 |
5.5 本章小结 | 第86-87页 |
主要结论与展望 | 第87-89页 |
主要结论 | 第87-88页 |
展望 | 第88-89页 |
论文创新点 | 第89-90页 |
致谢 | 第90-91页 |
参考文献 | 第91-103页 |
附录I:同型发酵乳杆菌活菌浓度与OD620标准曲线 | 第103-104页 |
附录II:双歧杆菌活菌浓度与OD620标准曲线 | 第104-105页 |
附录III:作者在攻读博士学位期间发表的论文 | 第105页 |