| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第1章 绪论 | 第13-30页 |
| 1.1 脂质体的研究现状 | 第13-26页 |
| 1.1.1 脂质体的定义 | 第13-16页 |
| 1.1.2 脂质体的特点 | 第16页 |
| 1.1.3 脂质体的制备方法 | 第16-19页 |
| 1.1.4 新生代脂质体 | 第19-20页 |
| 1.1.5 脂质体在食品行业中的应用 | 第20-23页 |
| 1.1.6 脂质体研究存在的问题 | 第23-26页 |
| 1.2 课题来源、选题意义及研究内容 | 第26-30页 |
| 1.2.1 课题来源 | 第26-27页 |
| 1.2.2 选题意义 | 第27-28页 |
| 1.2.3 研究内容 | 第28-30页 |
| 第2章 荧光标记的空白脂质体的体外模拟胃肠道消化稳定性 | 第30-48页 |
| 2.1 仪器与实验材料 | 第30-31页 |
| 2.1.1 仪器与设备 | 第30-31页 |
| 2.1.2 实验材料 | 第31页 |
| 2.2 实验方法 | 第31-34页 |
| 2.2.1 脂质体制备 | 第32页 |
| 2.2.2 模拟人体胃液和肠液的配制 | 第32页 |
| 2.2.3 模拟人体胃肠道环境消化反应 | 第32-33页 |
| 2.2.4 脂质体平均粒径测定 | 第33页 |
| 2.2.5 脂质体表面电荷测定 | 第33页 |
| 2.2.6 脂质体微观形貌表征 | 第33-34页 |
| 2.2.7 脂解反应 | 第34页 |
| 2.2.8 荧光标记物的释放 | 第34页 |
| 2.3 实验结果与讨论 | 第34-47页 |
| 2.3.1 平均粒径的变化 | 第34-38页 |
| 2.3.2 表面电位的变化 | 第38-40页 |
| 2.3.3 微观结构变化 | 第40-43页 |
| 2.3.4 脂质体脂解作用 | 第43-45页 |
| 2.3.5 荧光标记脂质体结构的完整性 | 第45-47页 |
| 2.4 本章小结 | 第47-48页 |
| 第3章 乳铁蛋白脂质体的体外模拟胃肠道消化稳定性 | 第48-63页 |
| 3.1 仪器与实验材料 | 第49页 |
| 3.1.1 仪器与设备 | 第49页 |
| 3.1.2 实验材料 | 第49页 |
| 3.2 实验方法 | 第49-53页 |
| 3.2.1 乳铁蛋白脂质体的制备 | 第50页 |
| 3.2.2 乳铁蛋白脂质体的性质表征 | 第50-52页 |
| 3.2.3 模拟胃液及小肠液的配制 | 第52页 |
| 3.2.4 脂质水解 | 第52页 |
| 3.2.5 蛋白质的水解和释放 | 第52-53页 |
| 3.3 实验结果与讨论 | 第53-62页 |
| 3.3.1 乳铁蛋白脂质体物理化学性质表征 | 第53-55页 |
| 3.3.2 乳铁蛋白脂质体在消化过程中平均粒径的变化 | 第55-57页 |
| 3.3.3 乳铁蛋白脂质体在消化过程中zeta电位的变化 | 第57页 |
| 3.3.4 脂质体在消化过程中微观形貌的变化 | 第57-59页 |
| 3.3.5 脂质体的脂解作用 | 第59页 |
| 3.3.6 脂质体中的蛋白质在消化过程中的稳定性 | 第59-62页 |
| 3.4 本章小结 | 第62-63页 |
| 第4章 壳聚糖-海藻酸钠双层修饰脂质体的制备及其性质表征 | 第63-80页 |
| 4.1 仪器与实验材料 | 第64-65页 |
| 4.1.1 仪器与设备 | 第64-65页 |
| 4.1.2 实验材料 | 第65页 |
| 4.2 实验方法 | 第65-69页 |
| 4.2.1 MCFAs纳米脂质体的制备 | 第66页 |
| 4.2.2 壳聚糖(CH)与海藻酸钠(AL)溶液的配制 | 第66页 |
| 4.2.3 壳聚糖修饰的脂质体的制备 | 第66-67页 |
| 4.2.4 壳聚糖-海藻酸钠双层修饰的脂质体(PDS) | 第67-68页 |
| 4.2.5 PDS平均粒径及表面电荷 | 第68页 |
| 4.2.6 PDS包封率测定 | 第68页 |
| 4.2.7 微观形貌 | 第68-69页 |
| 4.2.8 傅利叶红外光谱结构表征 | 第69页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第69-79页 |
| 4.3.1 最优CH浓度的确定 | 第69-70页 |
| 4.3.2 AL最优浓度的确定 | 第70-72页 |
| 4.3.3 AL和CH的相互作用 | 第72-73页 |
| 4.3.4 PDS的性质平均粒径,表面电荷以及包封率 | 第73-74页 |
| 4.3.5 微观形貌表征 | 第74-78页 |
| 4.3.6 傅利叶红外变换图谱 | 第78-79页 |
| 4.4 本章小结 | 第79-80页 |
| 第5章 壳聚糖-海藻酸钠双层修饰脂质体的物化稳定性和消化稳定性 | 第80-98页 |
| 5.1 仪器与实验材料 | 第80-81页 |
| 5.1.1 仪器与设备 | 第80页 |
| 5.1.2 实验材料 | 第80-81页 |
| 5.2 实验方法 | 第81-83页 |
| 5.2.1 热处理加速稳定性 | 第81-82页 |
| 5.2.2 pH稳定性 | 第82页 |
| 5.2.3 离子强度稳定性 | 第82页 |
| 5.2.4 体外模拟消化稳定性 | 第82页 |
| 5.2.5 结构完整性 | 第82-83页 |
| 5.2.6 MCFAs在体外模拟消化过程中的释放动力学 | 第83页 |
| 5.3 实验结果与讨论 | 第83-96页 |
| 5.3.1 PDS的热处理加速稳定性 | 第83-87页 |
| 5.3.2 PDS的pH稳定性 | 第87-91页 |
| 5.3.3 PDS的离子强度稳定性 | 第91-92页 |
| 5.3.4 PDS在消化过程中的平均粒径与表面电荷的变化 | 第92-93页 |
| 5.3.5 PDS的脂解作用 | 第93-95页 |
| 5.3.6 MCFAs的释放动力学 | 第95-96页 |
| 5.4 本章小结 | 第96-98页 |
| 第6章 脂质体的形成机理及其热力学稳定性 | 第98-126页 |
| 6.1 仪器与实验材料 | 第99-100页 |
| 6.1.1 仪器与设备 | 第99页 |
| 6.1.2 实验材料 | 第99-100页 |
| 6.2 实验方法 | 第100-102页 |
| 6.2.1 粗脂质体及纳米脂质体的制备 | 第100页 |
| 6.2.2 脂质体物化性质表征 | 第100-101页 |
| 6.2.3 脂质体结构特性 | 第101页 |
| 6.2.4 热力学稳定性研究 | 第101-102页 |
| 6.3 实验结果与讨论 | 第102-124页 |
| 6.3.1 DHPM处理前后脂质体物化性质表征 | 第102-103页 |
| 6.3.2 DHPM处理前后脂质体结构特性的变化 | 第103-108页 |
| 6.3.3 DHPM处理前后脂质体热力学稳定性变化 | 第108-115页 |
| 6.3.4 脂质体形成结构模型及其形成机理 | 第115-121页 |
| 6.3.5 脂质体结构与热力学稳定性关系 | 第121-124页 |
| 6.4 本章小结 | 第124-126页 |
| 第7章 结论与展望 | 第126-131页 |
| 7.1 课题成果总结 | 第126-129页 |
| 7.1.1 荧光标记脂质体的体外模拟胃肠道消化稳定性研究 | 第126页 |
| 7.1.2 乳铁蛋白脂质体体外模拟胃肠道消化稳定性研究 | 第126-127页 |
| 7.1.3 壳聚糖-海藻酸钠双层修饰脂质体的制备及其性质的表征 | 第127页 |
| 7.1.4 壳聚糖-海藻酸钠双层修饰脂质体的物化稳定性和消化稳定性 | 第127-128页 |
| 7.1.5 脂质体组装机理及其结构与热力学稳定性关系 | 第128-129页 |
| 7.2 创新点 | 第129页 |
| 7.3 展望 | 第129-131页 |
| 致谢 | 第131-132页 |
| 参考文献 | 第132-152页 |
| 攻读学位期间的研究成果 | 第152-154页 |
