| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 引言 | 第17-23页 |
| 0.1 芽类食品简介 | 第17页 |
| 0.2 发芽花生 | 第17-18页 |
| 0.2.1 发芽花生的优势 | 第17页 |
| 0.2.2 花生及发芽过程中主要营养物质的变化 | 第17-18页 |
| 0.3 白藜芦醇 | 第18-21页 |
| 0.3.1 白藜芦醇简介 | 第18页 |
| 0.3.2 白藜芦醇的合成 | 第18-20页 |
| 0.3.3 白藜芦醇的功能特性 | 第20-21页 |
| 0.3.4 花生中的白藜芦醇 | 第21页 |
| 0.3.5 白藜芦醇的测定方法——高效液相色谱法(HPLC) | 第21页 |
| 0.4 研究目的与意义 | 第21-23页 |
| 第1章 花生中富集白藜芦醇最佳的萌发条件研究 | 第23-35页 |
| 1.1 实验目的 | 第23页 |
| 1.2 实验方案 | 第23页 |
| 1.3 实验试剂和仪器 | 第23-25页 |
| 1.3.1 实验花生 | 第23-24页 |
| 1.3.2 实验试剂 | 第24页 |
| 1.3.3 实验仪器 | 第24-25页 |
| 1.4 实验方法 | 第25-26页 |
| 1.4.1 发芽工艺 | 第25页 |
| 1.4.2 发芽工艺参数优化 | 第25页 |
| 1.4.3 响应面实验各水平和编码 | 第25-26页 |
| 1.4.4 白藜芦醇含量测定 | 第26页 |
| 1.4.5 数据处理分析 | 第26页 |
| 1.5 结果分析 | 第26-33页 |
| 1.5.1 发芽工艺结果单因素分析 | 第26-30页 |
| 1.5.2 响应面实验结果设计与分析 | 第30-33页 |
| 1.5.2.1 响应面实验结果 | 第30-31页 |
| 1.5.2.2 交互作用分析 | 第31-33页 |
| 1.5.2.3 验证性实验 | 第33页 |
| 1.6 本章小结 | 第33-35页 |
| 第2章 不同成熟度花生中白藜芦醇含量的测定 | 第35-44页 |
| 2.1 实验目的 | 第35页 |
| 2.2 实验方案 | 第35页 |
| 2.3 实验试剂和仪器 | 第35-36页 |
| 2.3.1 实验花生 | 第35-36页 |
| 2.3.2 实验试剂 | 第36页 |
| 2.3.3 实验仪器 | 第36页 |
| 2.4 实验方法 | 第36-39页 |
| 2.4.1 花生成熟度分级方法 | 第36-38页 |
| 2.4.2 实验流程 | 第38页 |
| 2.4.3 数据分析 | 第38-39页 |
| 2.5 结果分析 | 第39-41页 |
| 2.5.1 不同成熟度花生表观和种子差异 | 第39-41页 |
| 2.6 不同成熟度花生中白藜芦醇含量 | 第41-43页 |
| 2.7 本章小结 | 第43-44页 |
| 第3章 阜花17号与多种不同油酸品种萌发试验 | 第44-52页 |
| 3.1 实验目的 | 第44页 |
| 3.2 实验方案 | 第44页 |
| 3.3 实验试剂和仪器 | 第44-45页 |
| 3.3.1 实验花生 | 第44-45页 |
| 3.3.2 实验试剂 | 第45页 |
| 3.3.3 实验仪器 | 第45页 |
| 3.4 实验方法 | 第45-46页 |
| 3.4.1 气相色谱法测定花生中的脂肪酸 | 第45-46页 |
| 3.4.2 萌发条件 | 第46页 |
| 3.4.3 高效液相色谱法测定白藜芦醇含量 | 第46页 |
| 3.5 结果分析 | 第46-50页 |
| 3.5.1 气相色谱测定19种花生脂肪酸含量。 | 第46-49页 |
| 3.5.2 高效液相色谱测定19种花生白藜芦醇含量 | 第49-50页 |
| 3.6 本章小结 | 第50-52页 |
| 第4章 花生萌发过程中营养成分的变化 | 第52-68页 |
| 4.1 实验目的 | 第52页 |
| 4.2 实验方案 | 第52页 |
| 4.3 实验主要仪器和试剂 | 第52-54页 |
| 4.3.1 实验试剂 | 第52-53页 |
| 4.3.2 实验仪器 | 第53-54页 |
| 4.4 实验方法 | 第54-56页 |
| 4.4.1 花生萌发过程中芽长的测定 | 第54页 |
| 4.4.2 花生萌发过程中含水率的测定 | 第54页 |
| 4.4.3 花生萌发过程中粗灰分的测定 | 第54-55页 |
| 4.4.4 花生萌发过程中粗脂肪的测定 | 第55页 |
| 4.4.5 花生萌发过程中总蛋白的测定 | 第55页 |
| 4.4.6 花生萌发过程中总糖的测定 | 第55页 |
| 4.4.7 花生萌发过程中氨基酸的测定 | 第55-56页 |
| 4.4.8 花生萌发过程中白藜芦醇的测定 | 第56页 |
| 4.4.9 数据分析 | 第56页 |
| 4.5 实验结果 | 第56-66页 |
| 4.5.1 花生萌发过程中芽长的变化 | 第57-58页 |
| 4.5.2 花生萌发过程中含水率的变化 | 第58页 |
| 4.5.3 花生萌发过程中灰分的变化 | 第58-59页 |
| 4.5.4 花生萌发过程中粗脂肪的变化 | 第59-60页 |
| 4.5.5 花生萌发过程中蛋白质的变化 | 第60-61页 |
| 4.5.6 花生萌发过程中游离氨基酸的变化 | 第61页 |
| 4.5.7 花生萌发过程中总糖的变化 | 第61-62页 |
| 4.5.8 花生萌发过程中18种氨基酸的变化 | 第62-65页 |
| 4.5.9 花生萌发过程中白藜芦醇的变化 | 第65-66页 |
| 4.6 本章小结 | 第66-68页 |
| 第5章 白藜芦醇合成关键限速酶芪合酶的研究 | 第68-80页 |
| 5.1 实验目的 | 第68页 |
| 5.2 实验方案 | 第68页 |
| 5.3 实验试剂和仪器 | 第68-69页 |
| 5.3.1 实验花生 | 第68页 |
| 5.3.2 实验试剂 | 第68-69页 |
| 5.3.3 实验仪器 | 第69页 |
| 5.4 实验方法及流程 | 第69-73页 |
| 5.4.1 花生的萌发 | 第70页 |
| 5.4.2 样品前处理 | 第70页 |
| 5.4.3 引物的合成 | 第70页 |
| 5.4.4 RNA的提取及纯化 | 第70-71页 |
| 5.4.5 RNA浓度检测 | 第71页 |
| 5.4.6 cDNA第一链合成(反转录) | 第71-72页 |
| 5.4.7 实时荧光定量分析 | 第72-73页 |
| 5.4.8 数据分析 | 第73页 |
| 5.5 结果分析 | 第73-78页 |
| 5.5.1 阜花17号内参基因及目的基因的扩增曲线及溶解曲线 | 第73-74页 |
| 5.5.2 L61号内参基因及目的基因的扩增曲线及溶解曲线 | 第74-75页 |
| 5.5.3 FH17号荧光相对定量结果分析 | 第75-77页 |
| 5.5.4 L61号荧光相对定量数据 | 第77-78页 |
| 5.6 本章小结 | 第78-80页 |
| 第6章 结论 | 第80-82页 |
| 6.1 主要结论 | 第80-81页 |
| 6.2 创新点 | 第81页 |
| 6.3 展望 | 第81-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-86页 |
