| 缩略语表 | 第1-10页 |
| 摘要 | 第10-11页 |
| Abstract | 第11-13页 |
| 第一章 引言 | 第13-25页 |
| ·酿酒酵母酒精及甘油发酵 | 第14-15页 |
| ·酿酒酵母乙醇脱氢酶 | 第14-15页 |
| ·酿酒酵母甘油合成关键酶 | 第15页 |
| ·葡萄原花色素 | 第15-17页 |
| ·葡萄原花色素的结构 | 第16页 |
| ·葡萄原花色素的分布 | 第16页 |
| ·葡萄原花色素的功能性研究 | 第16-17页 |
| ·铜对生物生理代谢影响的研究 | 第17-19页 |
| ·铜对葡萄植株及果实影响的研究 | 第17页 |
| ·铜对酵母生长活性影响的研究 | 第17-19页 |
| ·铜对酿酒酵母发酵影响的研究 | 第19页 |
| ·酵母抗逆的研究 | 第19-22页 |
| ·铜对酿酒酵母逆境的机理 | 第19-20页 |
| ·酵母逆境应答系统 | 第20页 |
| ·酵母逆境应激代谢物 | 第20-22页 |
| ·立题依据和研究意义 | 第22-24页 |
| ·技术路线 | 第24-25页 |
| 第二章 Cu~(2+)对酿酒酵母生长活性和酒精发酵特性的影响 | 第25-39页 |
| ·试验材料 | 第26-27页 |
| ·酵母菌株 | 第26-27页 |
| ·试剂 | 第27页 |
| ·试验仪器 | 第27页 |
| ·培养基 | 第27页 |
| ·试验方法 | 第27-28页 |
| ·Cu~(2+)处理浓度的确定 | 第27页 |
| ·模拟葡萄汁发酵 | 第27-28页 |
| ·酿酒酵母活菌数的测定 | 第28页 |
| ·CO_2失重的测定 | 第28页 |
| ·发酵产物测定 | 第28页 |
| ·数据分析 | 第28页 |
| ·结果与分析 | 第28-37页 |
| ·发酵代谢产物标准曲线 | 第28-30页 |
| ·不同浓度Cu~(2+)对酵母细胞CO_2释放的影响 | 第30-31页 |
| ·筛选的Cu~(2+)浓度对酵母酒精发酵的CO_2释放的影响 | 第31-32页 |
| ·Cu~(2+)浓度对酿酒酵母生长的影响 | 第32-33页 |
| ·Cu~(2+)浓度对酿酒酵母糖利用的影响 | 第33-35页 |
| ·Cu~(2+)浓度对发酵液乙醇产量的影响 | 第35页 |
| ·Cu~(2+)浓度对发酵液甘油产量的影响 | 第35-36页 |
| ·Cu~(2+)浓度对发酵液酒精和甘油总积累量的影响 | 第36-37页 |
| ·讨论 | 第37-39页 |
| 第三章 铜逆境下原花色素对酿酒酵母活性和酒精发酵的影响 | 第39-56页 |
| ·试验材料 | 第41-42页 |
| ·酵母菌株 | 第41页 |
| ·试剂 | 第41-42页 |
| ·试验仪器 | 第42页 |
| ·培养基 | 第42页 |
| ·试验方法 | 第42-44页 |
| ·Cu~(2+)处理浓度和原花色素添加浓度 | 第42页 |
| ·模拟葡萄汁发酵 | 第42页 |
| ·酿酒酵母活菌数的测定 | 第42-43页 |
| ·CO_2失重的测定 | 第43页 |
| ·发酵产物测定 | 第43页 |
| ·Cu~(2+)含量测定方法 | 第43-44页 |
| ·数据分析 | 第44页 |
| ·结果与分析 | 第44-53页 |
| ·发酵代谢产物标准曲线 | 第44页 |
| ·铜逆境下原花色素对酿酒酵母生长的影响 | 第44-45页 |
| ·铜逆境下原花色素对酿酒酵母CO_2释放的影响 | 第45-46页 |
| ·铜逆境下原花色素对酿酒酵母糖利用的影响 | 第46-49页 |
| ·铜逆境下原花色素对发酵液乙醇产量的影响 | 第49页 |
| ·铜逆境下原花色素对发酵液甘油产量的影响 | 第49-51页 |
| ·铜逆境发酵下原花色素对发酵液中Cu~(2+)浓度变化的影响 | 第51-53页 |
| ·未接菌模拟葡萄汁中Cu~(2+)浓度变化 | 第53页 |
| ·讨论 | 第53-56页 |
| 第四章 铜逆境下酿酒酵母ADH1与GPD1基因表达规律及原花色素的影响 | 第56-70页 |
| ·试验材料 | 第57-58页 |
| ·酵母菌株 | 第57页 |
| ·试剂 | 第57-58页 |
| ·试验仪器 | 第58页 |
| ·培养基 | 第58页 |
| ·试验方法 | 第58-62页 |
| ·Cu~(2+)处理浓度和原花色素添加浓度 | 第58页 |
| ·模拟葡萄汁发酵 | 第58页 |
| ·菌体的收集方法 | 第58-59页 |
| ·RNA提取与cDNA合成 | 第59-60页 |
| ·Real-time PCR | 第60-62页 |
| ·数据分析 | 第62页 |
| ·结果与分析 | 第62-68页 |
| ·RNA和PCR电泳结果图 | 第62-63页 |
| ·Real-time PCR 检测结果 | 第63-64页 |
| ·各样品Real-time PCR检测结果 | 第64-65页 |
| ·铜逆境下酿酒酵母 ADH1 基因相对表达量的变化规律 | 第65-66页 |
| ·铜逆境下酿酒酵母GPD1基因相对表达量的变化规律 | 第66-67页 |
| ·铜逆境下不同浓度原花色素对酿酒酵母ADH1基因相对表达量的影响 | 第67-68页 |
| ·铜逆境下不同浓度原花色素对酿酒酵母GPD1基因相对表达量的影响 | 第68页 |
| ·讨论 | 第68-70页 |
| 第五章 铜逆境下酿酒酵母海藻糖的诱导和抗氧化机制研究 | 第70-81页 |
| ·试验材料 | 第71-72页 |
| ·酵母菌株 | 第71页 |
| ·试剂 | 第71页 |
| ·试验仪器 | 第71页 |
| ·培养基 | 第71-72页 |
| ·试验方法 | 第72-76页 |
| ·试验处理的设置 | 第72页 |
| ·改良模拟葡萄汁培养 | 第72页 |
| ·海藻糖的检测 | 第72-73页 |
| ·膜脂过氧化(MDA)的检测 | 第73页 |
| ·酵母胞内ROS的检测 | 第73页 |
| ·RNA 提取 | 第73-74页 |
| ·cDNA 合成 | 第74-75页 |
| ·RT-PCR | 第75页 |
| ·数据分析 | 第75-76页 |
| ·结果与分析 | 第76-79页 |
| ·铜浓度和海藻糖预处理浓度的设置 | 第76-77页 |
| ·热锻炼和海藻糖预处理对Cu~(2+)逆境下酵母细胞胞内海藻糖浓度的影响 | 第77-78页 |
| ·热锻炼和海藻糖预处理对Cu~(2+)逆境下酵母TPS1相对表达量的影响 | 第78页 |
| ·热锻炼和海藻糖预处理对Cu~(2+)逆境下酵母细胞胞内ROS、MDA(丙二醛)含量和活菌数的影响 | 第78-79页 |
| ·讨论 | 第79-81页 |
| 第六章 结论与推论 | 第81-84页 |
| 参考文献 | 第84-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
| 个人简历 | 第93页 |
