摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
缩略符号对照表 | 第7-11页 |
1 绪论 | 第11-20页 |
1.1 双歧杆菌概述 | 第11-14页 |
1.1.1 双歧杆菌的发现及定义 | 第11页 |
1.1.2 双歧杆菌的基本生物学特性 | 第11页 |
1.1.3 双歧杆菌的种类及分布 | 第11-13页 |
1.1.4 双歧杆菌分离筛选研究进展 | 第13页 |
1.1.5 双歧杆菌的生理功能 | 第13页 |
1.1.6 双歧杆菌在食品中的应用 | 第13-14页 |
1.2 双歧杆菌的肠道定殖 | 第14-18页 |
1.2.1 肠道菌群及其组成 | 第14-15页 |
1.2.2 肠道菌群与人体健康 | 第15页 |
1.2.3 肠道定殖的概念 | 第15页 |
1.2.4 双歧杆菌肠道定殖的影响因素 | 第15-16页 |
1.2.5 双歧杆菌肠道定殖研究进展 | 第16-18页 |
1.2.6 双歧因子对双歧杆菌增殖的影响 | 第18页 |
1.3 本课题的立题背景及研究意义 | 第18-19页 |
1.4 技术路线及研究内容 | 第19-20页 |
2 材料与方法 | 第20-30页 |
2.1 实验材料与设备 | 第20-21页 |
2.1.1 材料与试剂 | 第20页 |
2.1.2 细胞、菌株及动物 | 第20页 |
2.1.3 培养基及缓冲液 | 第20-21页 |
2.1.4 主要仪器与设备 | 第21页 |
2.2 实验方法 | 第21-29页 |
2.2.1 双歧杆菌的分离鉴定 | 第21-23页 |
2.2.2 生长曲线的绘制 | 第23页 |
2.2.3 耐酸、耐胆盐测定 | 第23页 |
2.2.4 抑菌能力测定 | 第23-24页 |
2.2.5 粘附能力测定 | 第24页 |
2.2.6 对低聚糖的利用情况测定 | 第24页 |
2.2.7 动物实验设计 | 第24-25页 |
2.2.8 小鼠粪便细菌基因组和双歧杆菌基因组的提取 | 第25-26页 |
2.2.9 细菌 16S rDNA可变区的PCR扩增 | 第26-27页 |
2.2.10 双歧杆菌肠道定殖的检测 | 第27-28页 |
2.2.11 16S rDNA V4区PCR产物的胶回收与定量 | 第28页 |
2.2.12 16S rDNA宏基因组测序 | 第28页 |
2.2.13 粪便SCFAs的检测 | 第28-29页 |
2.2.14 小鼠体重及血清免疫因子的测定 | 第29页 |
2.3 数据处理及分析 | 第29-30页 |
3 结果与讨论 | 第30-54页 |
3.1 双歧杆菌的分离鉴定 | 第30-32页 |
3.1.1 双歧杆菌的定性鉴定 | 第30页 |
3.1.2 双歧杆菌的 16S rDNA鉴定 | 第30-32页 |
3.2 双歧杆菌生理特性的测定 | 第32-38页 |
3.2.1 双歧杆菌的生长曲线 | 第32-34页 |
3.2.2 双歧杆菌耐酸、耐胆盐特性 | 第34-35页 |
3.2.3 双歧杆菌的抑菌能力 | 第35-36页 |
3.2.4 双歧杆菌的粘附能力 | 第36-37页 |
3.2.5 双歧杆菌对低聚糖的利用情况 | 第37-38页 |
3.3 双歧杆菌的肠道定殖能力 | 第38-42页 |
3.3.1 粪便细菌基因组提取及 16S rDNA V3区PCR扩增 | 第38-39页 |
3.3.2 双歧杆菌标准图谱的建立 | 第39-40页 |
3.3.3 DGGE检测粪便中的双歧杆菌 | 第40-42页 |
3.4 双歧杆菌生理特性与肠道定殖能力的相关性 | 第42-44页 |
3.5 低聚糖对双歧杆菌定殖的作用及小鼠肠道菌群的变化 | 第44-51页 |
3.5.1 粪便细菌 16S rDNA V4区PCR扩增及荧光定量 | 第44-45页 |
3.5.2 宏基因组测序序列丰富度 | 第45页 |
3.5.3 小鼠肠道菌群的组成 | 第45-46页 |
3.5.4 小鼠肠道菌群多样性的变化 | 第46-48页 |
3.5.5 小鼠肠道菌群在门和属水平的变化 | 第48-51页 |
3.6 小鼠粪便SCFAs含量的变化 | 第51-52页 |
3.7 小鼠体重及血清免疫因子的变化 | 第52-54页 |
3.7.1 小鼠体重的变化情况 | 第52页 |
3.7.2 小鼠血清免疫因子的变化 | 第52-54页 |
主要结论与展望 | 第54-56页 |
致谢 | 第56-57页 |
参考文献 | 第57-65页 |
附录A: 作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第65-66页 |
附录B: 附图 | 第66-68页 |
附录C: 附表 | 第68页 |