| 中文摘要 | 第10-11页 |
| ABSTRACT | 第11-12页 |
| 第一章 绪论 | 第13-19页 |
| 1.1 种质资源概述 | 第13-14页 |
| 1.2 诱变技术研究现状 | 第14-16页 |
| 1.2.1 重组DNA创制法 | 第14-15页 |
| 1.2.2 物理诱变法 | 第15页 |
| 1.2.3 化学诱变法 | 第15-16页 |
| 1.3 谷类作物花粉诱变技术研究进展 | 第16-18页 |
| 1.3.1 谷类作物花粉生殖细胞诱变处理的必要性 | 第16-17页 |
| 1.3.2 MNU诱变处理的机理及优点 | 第17-18页 |
| 1.3.3 谷类作物花粉生殖细胞基因MNU诱变处理的技术瓶颈 | 第18页 |
| 1.4 本研究的内容与意义 | 第18-19页 |
| 1.4.1 研究内容 | 第18页 |
| 1.4.2 研究意义 | 第18-19页 |
| 第二章 系列水性条件处理下代表性谷类作物离体花粉的活力解析 | 第19-25页 |
| 2.1 引言 | 第19页 |
| 2.2 实验材料与设备 | 第19-20页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第19-20页 |
| 2.2.2 化学试剂 | 第20页 |
| 2.2.3 仪器与设备 | 第20页 |
| 2.3 实验方法 | 第20-21页 |
| 2.3.1 谷类作物离体花粉处理的水性环境设计 | 第20-21页 |
| 2.3.2 谷类作物离体花粉的活力测定 | 第21页 |
| 2.3.3 谷类作物花粉活力数据的统计分析 | 第21页 |
| 2.4 实验结果与分析 | 第21-24页 |
| 2.4.1 谷类作物离体花粉活力分析 | 第21-22页 |
| 2.4.2 谷类作物离体花粉活力的显著性分析 | 第22-23页 |
| 2.4.3 PBS与PVS1处理谷类作物离体花粉的形态学解析 | 第23-24页 |
| 2.5 讨论 | 第24页 |
| 2.6 本章小结 | 第24-25页 |
| 第三章 最优水性保护液体系下代表性谷类作物离体花粉的最适MNU诱变处理条件的确立 | 第25-33页 |
| 3.1 引言 | 第25页 |
| 3.2 材料与试剂 | 第25页 |
| 3.2.1 材料 | 第25页 |
| 3.2.2 试剂 | 第25页 |
| 3.3 实验方法 | 第25-26页 |
| 3.3.1 单因素实验 | 第25-26页 |
| 3.3.2 正交实验设计 | 第26页 |
| 3.3.3 验证实验 | 第26页 |
| 3.4 结果与分析 | 第26-31页 |
| 3.4.1 单因素实验 | 第26-29页 |
| 3.4.2 离体玉米花粉MNU诱变处理条件的优化 | 第29-30页 |
| 3.4.3 离体玉米花粉MNU诱变处理的验证实验 | 第30-31页 |
| 3.5 讨论 | 第31页 |
| 3.6 本章小结 | 第31-33页 |
| 第四章 最适MNU诱变处理条件下代表性谷类作物离体花粉授粉受精过程的发育形态学解析 | 第33-40页 |
| 4.1 引言 | 第33页 |
| 4.2 材料与试剂 | 第33-34页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第33页 |
| 4.2.2 化学试剂 | 第33页 |
| 4.2.3 仪器与设备 | 第33-34页 |
| 4.3 实验方法 | 第34-35页 |
| 4.3.1 最适MNU诱变处理后谷类作物花粉表面形态的扫描电镜观察 | 第34页 |
| 4.3.2 最适MNU诱变处理后谷类作物花粉的离体萌发观察 | 第34页 |
| 4.3.3 授粉后各时期谷类作物花粉发育形态荧光显微镜观察 | 第34-35页 |
| 4.3.4 大田试验 | 第35页 |
| 4.4 结果与分析 | 第35-38页 |
| 4.4.1 扫描电子显微镜观察结果 | 第35页 |
| 4.4.2 花粉离体萌发的观察结果 | 第35-37页 |
| 4.4.3 荧光显微镜观察结果 | 第37页 |
| 4.4.4 大田试验结棒率统计结果 | 第37-38页 |
| 4.5 讨论 | 第38-39页 |
| 4.6 本章小结 | 第39-40页 |
| 第五章 结论与展望 | 第40-42页 |
| 5.1 结论 | 第40页 |
| 5.2 展望 | 第40-42页 |
| 参考文献 | 第42-49页 |
| 附录 | 第49-50页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第50-51页 |
| 致谢 | 第51-52页 |
| 个人简况及联系方式 | 第52-54页 |
