| 摘要 | 第1-6页 |
| ABSTRACT | 第6-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-22页 |
| ·生物胺 | 第10页 |
| ·生物胺的生理功能 | 第10-11页 |
| ·生物胺引起的食品安全问题 | 第11-12页 |
| ·生物胺的检测方法 | 第12-19页 |
| ·微生物学方法 | 第12页 |
| ·薄层色谱（Thin-layer chromatography，TLC） | 第12-13页 |
| ·毛细管电泳（Capillary electrophoresis，CE） | 第13-14页 |
| ·生物传感器 | 第14页 |
| ·液相色谱 | 第14-17页 |
| ·分子生物学方法 | 第17-19页 |
| ·减少生物胺含量的方法 | 第19-20页 |
| ·立题意义 | 第20页 |
| ·研究内容 | 第20-21页 |
| ·技术路线 | 第21-22页 |
| 第二章 材料与方法 | 第22-27页 |
| ·实验菌种及酒样 | 第22页 |
| ·培养基 | 第22页 |
| ·试剂 | 第22页 |
| ·仪器与设备 | 第22-23页 |
| ·试验方法 | 第23-27页 |
| ·引物的选择 | 第23页 |
| ·菌株活化 | 第23页 |
| ·基因组 DNA 的提取 | 第23-24页 |
| ·基因组 DNA 浓度的测定 | 第24页 |
| ·单重 PCR 扩增反应 | 第24页 |
| ·双重 PCR 扩增反应 | 第24-25页 |
| ·三重 PCR 扩增反应 | 第25页 |
| ·PCR 产物检测 | 第25页 |
| ·标准溶液的配置 | 第25页 |
| ·色谱条件的选择 | 第25-26页 |
| ·样品制备 | 第26页 |
| ·生物胺的衍生 | 第26页 |
| ·生物胺含量计算 | 第26-27页 |
| 第三章 结果与分析 | 第27-40页 |
| ·基因组 DNA 的检测 | 第27页 |
| ·退火温度对 PCR 扩增结果的影响 | 第27-31页 |
| ·退火温度对引物对 JV16HC/JV17HC 扩增结果的影响 | 第27-28页 |
| ·退火温度对引物对 TD2/TD5 扩增结果的影响 | 第28页 |
| ·退火温度对引物对 AODC1/16 扩增结果的影响 | 第28-29页 |
| ·退火温度对引物对 JV16HC/JV17HC 和 TD2/TD5 同时扩增的影响 | 第29页 |
| ·退火温度对引物对 JV16HC/JV17HC 和 AODC1/16 同时扩增的影响 | 第29-30页 |
| ·退火温度对引物对 TD2/TD5 和 AODC1/16 同时扩增结果的影响 | 第30页 |
| ·退火温度对三重 PCR 扩增结果的影响 | 第30-31页 |
| ·酒酒球菌氨基酸脱羧酶基因检测 | 第31-33页 |
| ·酒酒球菌组氨酸脱羧酶基因的检测 | 第31-32页 |
| ·酒酒球菌酪氨酸脱羧酶基因的检测 | 第32页 |
| ·酒酒球菌中鸟氨酸脱羧酶基因的检测 | 第32-33页 |
| ·酒酒球菌氨基酸脱羧酶基因 PCR 扩增 | 第33页 |
| ·高效液相色谱方法的建立 | 第33-35页 |
| ·衍生试剂的选择 | 第33-34页 |
| ·检测器的选择 | 第34-35页 |
| ·内标的选择 | 第35页 |
| ·色谱条件的选择 | 第35页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第35-36页 |
| ·酒酒球菌培养液中生物胺的测定 | 第36-38页 |
| ·酒酒球菌安全性评估 | 第38页 |
| ·酒样中生物胺的检测 | 第38-40页 |
| 第四章 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-46页 |
| 致谢 | 第46-47页 |
| 作者简介 | 第47页 |
