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含氧类胡萝卜素异构体的制备纯化,吸收代谢及对肠道功能的影响

摘要第3-5页
Abstract第5-7页
缩写符号说明第8-14页
第一章 绪论第14-29页
    1.1 含氧类胡萝卜素第14-18页
        1.1.1 虾青素第14-17页
        1.1.2 叶黄素第17-18页
    1.2 类胡萝卜素异构化方法第18-19页
        1.2.1 类胡萝卜素异构体的分析鉴定第18页
        1.2.2 顺式含氧类胡萝卜素的制备方法第18-19页
    1.3 类胡萝卜素的吸收代谢第19-21页
        1.3.1 吸收代谢机制第19-20页
        1.3.2 生物可给率与生物利用度第20-21页
    1.4 含氧类胡萝卜素的功能活性第21-27页
        1.4.1 抗氧化活性第21-23页
        1.4.2 抗氧化应激作用第23-25页
        1.4.3 抗炎活性第25-26页
        1.4.4 虾青素的抗氧化应激、抗炎作用第26-27页
    1.5 研究现状及存在问题第27页
    1.6 立题背景与意义第27-28页
    1.7 课题主要研究内容第28-29页
第二章 虾青素顺式异构体制备及其物理化学性质研究第29-44页
    2.1 引言第29页
    2.2 实验材料与仪器第29-30页
        2.2.1 材料与试剂第29-30页
        2.2.2 主要仪器第30页
    2.3 实验方法第30-34页
        2.3.1 虾青素异构体的制备第30-31页
        2.3.2 虾青素异构体的分析鉴定第31页
        2.3.3 虾青素异构体的分离纯化第31-32页
        2.3.4 化学方法测定体外抗氧化活性第32-33页
        2.3.5 细胞培养第33页
        2.3.6 WST-1法测定细胞活力第33页
        2.3.7 细胞内抗氧化活性(CAA)测定第33-34页
        2.3.8 不同pH对虾青素异构体稳定性的影响第34页
        2.3.9 不同金属离子对虾青素异构体稳定性的影响第34页
        2.3.10 数据分析第34页
    2.4 结果与讨论第34-42页
        2.4.1 全反式虾青素的异构化第34-37页
        2.4.2 虾青素异构体的分离纯化与鉴定第37-39页
        2.4.3 虾青素异构体的抗氧化活性比较第39-41页
        2.4.4 pH对虾青素异构体稳定性的影响第41-42页
        2.4.5 金属离子对虾青素异构体稳定性的影响第42页
    2.5 本章小结第42-44页
第三章 虾青素顺式异构体体外消化吸收机制探讨第44-53页
    3.1 引言第44页
    3.2 实验材料与仪器第44-45页
        3.2.1 材料与试剂第44页
        3.2.2 主要仪器第44-45页
    3.3 实验方法第45-46页
        3.3.1 虾青素异构体的制备及纯化第45页
        3.3.2 虾青素异构体的分析第45页
        3.3.3 体外模拟消化实验第45-46页
        3.3.4 细胞培养第46页
        3.3.5 跨上皮电阻(TEER)测量第46页
        3.3.6 Caco-2细胞对虾青素异构体的吸收和分泌第46页
        3.3.7 数据分析第46页
    3.4 结果与讨论第46-51页
        3.4.1 体外消化期间虾青素异构体的结构组成变化第46-48页
        3.4.2 虾青素异构体的生物可给率第48-49页
        3.4.3 Caco-2细胞对虾青素异构体的吸收代谢第49-50页
        3.4.4 肠细胞吸收代谢过程中虾青素异构体的组成变化第50-51页
    3.5 本章小结第51-53页
第四章 虾青素异构体对肠道细胞抵御氧化应激损伤的影响第53-63页
    4.1 引言第53页
    4.2 实验材料与仪器第53页
        4.2.1 材料与试剂第53页
        4.2.2 主要仪器第53页
    4.3 实验方法第53-56页
        4.3.1 顺式虾青素的制备分离与分析第53-54页
        4.3.2 细胞培养第54页
        4.3.3 氧化应激的诱导第54页
        4.3.4 白细胞介素-8(IL-8)含量测定第54页
        4.3.5 细胞活力测定第54-55页
        4.3.6 RNA的提取和反转录第55页
        4.3.7 荧光实时定量PCR第55页
        4.3.8 抗氧化酶酶活测定第55页
        4.3.9 细胞内谷胱甘肽的测定第55-56页
        4.3.10 数据分析第56页
    4.4 结果与讨论第56-62页
        4.4.1 不同浓度H_2O_2对Caco-2细胞活性的影响第56页
        4.4.2 不同浓度H_2O_2对Caco-2细胞IL-8分泌水平的影响第56-57页
        4.4.3 虾青素异构体对H_2O_2诱导的Caco-2细胞活力的影响第57页
        4.4.4 虾青素异构体对H_2O_2诱导Caco-2细胞分泌IL-8的抑制作用第57-59页
        4.4.5 虾青素异构体对H_2O_2诱导Caco-2细胞内抗氧化酶活性的影响第59-61页
        4.4.6 虾青素异构体对GSH含量的影响第61-62页
    4.5 本章小结第62-63页
第五章 虾青素异构体的抗炎活性研究第63-70页
    5.1 引言第63页
    5.2 实验材料与仪器第63-64页
        5.2.1 材料与试剂第63页
        5.2.2 主要仪器第63-64页
    5.3 实验方法第64-66页
        5.3.1 顺式虾青素的制备分离与分析第64页
        5.3.2 细胞的培养及分化第64页
        5.3.3 跨上皮电阻测量第64页
        5.3.4 炎症的诱导第64-65页
        5.3.5 细胞活力测定第65页
        5.3.6 IL-8含量测定第65页
        5.3.7 RNA的提取和反转录第65页
        5.3.8 荧光实时定量PCR第65页
        5.3.9 蛋白免疫印迹(Westernblot,WB)第65-66页
        5.3.10 数据分析第66页
    5.4 结果与讨论第66-69页
        5.4.1 虾青素顺反异构体在TNF-α诱导的Caco-2细胞中的抗炎活性第66-67页
        5.4.2 虾青素顺反异构体在TNF-α诱导的Caco-2细胞中细胞因子mRNA表达的影响第67-68页
        5.4.3 虾青素顺反异构体对NF-κB信号通路的影响第68-69页
    5.5 本章小结第69-70页
第六章 叶黄素异构体的吸收代谢及抗氧化性质研究第70-84页
    6.1 引言第70页
    6.2 实验材料与仪器第70-71页
        6.2.1 材料与试剂第70-71页
        6.2.2 主要仪器第71页
    6.3 实验方法第71-74页
        6.3.1 叶黄素异构体的制备第71页
        6.3.2 叶黄素异构体的分析检测第71页
        6.3.3 叶黄素异构体的分离纯化第71-72页
        6.3.4 叶黄素异构体的鉴定第72页
        6.3.5 化学方法测定体外抗氧化活性第72-73页
        6.3.6 细胞培养及分化第73页
        6.3.7 细胞活力测定第73页
        6.3.8 体外模拟消化实验第73-74页
        6.3.9 Caco-2细胞对叶黄素异构体的吸收代谢第74页
        6.3.10 细胞内抗氧化活性(CAA)测定第74页
        6.3.11 统计分析第74页
    6.4 结果与讨论第74-83页
        6.4.1 叶黄素异构体的制备第74-75页
        6.4.2 叶黄素异构体的分离纯化与鉴定第75-77页
        6.4.3 叶黄素异构体的抗氧化活性比较第77-79页
        6.4.4 体外消化期间叶黄素异构体的结构组成变化第79-81页
        6.4.5 叶黄素异构体的生物可给率第81页
        6.4.6 Caco-2细胞对叶黄素异构体的吸收代谢第81-82页
        6.4.7 叶黄素异构体在细胞内的抗氧化活性第82-83页
    6.5 本章小结第83-84页
主要结论及展望第84-86页
论文创新点第86-87页
致谢第87-89页
参考文献第89-100页
作者攻读博士期间成果清单第100页

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