摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-7页 |
缩写符号说明 | 第8-14页 |
第一章 绪论 | 第14-29页 |
1.1 含氧类胡萝卜素 | 第14-18页 |
1.1.1 虾青素 | 第14-17页 |
1.1.2 叶黄素 | 第17-18页 |
1.2 类胡萝卜素异构化方法 | 第18-19页 |
1.2.1 类胡萝卜素异构体的分析鉴定 | 第18页 |
1.2.2 顺式含氧类胡萝卜素的制备方法 | 第18-19页 |
1.3 类胡萝卜素的吸收代谢 | 第19-21页 |
1.3.1 吸收代谢机制 | 第19-20页 |
1.3.2 生物可给率与生物利用度 | 第20-21页 |
1.4 含氧类胡萝卜素的功能活性 | 第21-27页 |
1.4.1 抗氧化活性 | 第21-23页 |
1.4.2 抗氧化应激作用 | 第23-25页 |
1.4.3 抗炎活性 | 第25-26页 |
1.4.4 虾青素的抗氧化应激、抗炎作用 | 第26-27页 |
1.5 研究现状及存在问题 | 第27页 |
1.6 立题背景与意义 | 第27-28页 |
1.7 课题主要研究内容 | 第28-29页 |
第二章 虾青素顺式异构体制备及其物理化学性质研究 | 第29-44页 |
2.1 引言 | 第29页 |
2.2 实验材料与仪器 | 第29-30页 |
2.2.1 材料与试剂 | 第29-30页 |
2.2.2 主要仪器 | 第30页 |
2.3 实验方法 | 第30-34页 |
2.3.1 虾青素异构体的制备 | 第30-31页 |
2.3.2 虾青素异构体的分析鉴定 | 第31页 |
2.3.3 虾青素异构体的分离纯化 | 第31-32页 |
2.3.4 化学方法测定体外抗氧化活性 | 第32-33页 |
2.3.5 细胞培养 | 第33页 |
2.3.6 WST-1法测定细胞活力 | 第33页 |
2.3.7 细胞内抗氧化活性(CAA)测定 | 第33-34页 |
2.3.8 不同pH对虾青素异构体稳定性的影响 | 第34页 |
2.3.9 不同金属离子对虾青素异构体稳定性的影响 | 第34页 |
2.3.10 数据分析 | 第34页 |
2.4 结果与讨论 | 第34-42页 |
2.4.1 全反式虾青素的异构化 | 第34-37页 |
2.4.2 虾青素异构体的分离纯化与鉴定 | 第37-39页 |
2.4.3 虾青素异构体的抗氧化活性比较 | 第39-41页 |
2.4.4 pH对虾青素异构体稳定性的影响 | 第41-42页 |
2.4.5 金属离子对虾青素异构体稳定性的影响 | 第42页 |
2.5 本章小结 | 第42-44页 |
第三章 虾青素顺式异构体体外消化吸收机制探讨 | 第44-53页 |
3.1 引言 | 第44页 |
3.2 实验材料与仪器 | 第44-45页 |
3.2.1 材料与试剂 | 第44页 |
3.2.2 主要仪器 | 第44-45页 |
3.3 实验方法 | 第45-46页 |
3.3.1 虾青素异构体的制备及纯化 | 第45页 |
3.3.2 虾青素异构体的分析 | 第45页 |
3.3.3 体外模拟消化实验 | 第45-46页 |
3.3.4 细胞培养 | 第46页 |
3.3.5 跨上皮电阻(TEER)测量 | 第46页 |
3.3.6 Caco-2细胞对虾青素异构体的吸收和分泌 | 第46页 |
3.3.7 数据分析 | 第46页 |
3.4 结果与讨论 | 第46-51页 |
3.4.1 体外消化期间虾青素异构体的结构组成变化 | 第46-48页 |
3.4.2 虾青素异构体的生物可给率 | 第48-49页 |
3.4.3 Caco-2细胞对虾青素异构体的吸收代谢 | 第49-50页 |
3.4.4 肠细胞吸收代谢过程中虾青素异构体的组成变化 | 第50-51页 |
3.5 本章小结 | 第51-53页 |
第四章 虾青素异构体对肠道细胞抵御氧化应激损伤的影响 | 第53-63页 |
4.1 引言 | 第53页 |
4.2 实验材料与仪器 | 第53页 |
4.2.1 材料与试剂 | 第53页 |
4.2.2 主要仪器 | 第53页 |
4.3 实验方法 | 第53-56页 |
4.3.1 顺式虾青素的制备分离与分析 | 第53-54页 |
4.3.2 细胞培养 | 第54页 |
4.3.3 氧化应激的诱导 | 第54页 |
4.3.4 白细胞介素-8(IL-8)含量测定 | 第54页 |
4.3.5 细胞活力测定 | 第54-55页 |
4.3.6 RNA的提取和反转录 | 第55页 |
4.3.7 荧光实时定量PCR | 第55页 |
4.3.8 抗氧化酶酶活测定 | 第55页 |
4.3.9 细胞内谷胱甘肽的测定 | 第55-56页 |
4.3.10 数据分析 | 第56页 |
4.4 结果与讨论 | 第56-62页 |
4.4.1 不同浓度H_2O_2对Caco-2细胞活性的影响 | 第56页 |
4.4.2 不同浓度H_2O_2对Caco-2细胞IL-8分泌水平的影响 | 第56-57页 |
4.4.3 虾青素异构体对H_2O_2诱导的Caco-2细胞活力的影响 | 第57页 |
4.4.4 虾青素异构体对H_2O_2诱导Caco-2细胞分泌IL-8的抑制作用 | 第57-59页 |
4.4.5 虾青素异构体对H_2O_2诱导Caco-2细胞内抗氧化酶活性的影响 | 第59-61页 |
4.4.6 虾青素异构体对GSH含量的影响 | 第61-62页 |
4.5 本章小结 | 第62-63页 |
第五章 虾青素异构体的抗炎活性研究 | 第63-70页 |
5.1 引言 | 第63页 |
5.2 实验材料与仪器 | 第63-64页 |
5.2.1 材料与试剂 | 第63页 |
5.2.2 主要仪器 | 第63-64页 |
5.3 实验方法 | 第64-66页 |
5.3.1 顺式虾青素的制备分离与分析 | 第64页 |
5.3.2 细胞的培养及分化 | 第64页 |
5.3.3 跨上皮电阻测量 | 第64页 |
5.3.4 炎症的诱导 | 第64-65页 |
5.3.5 细胞活力测定 | 第65页 |
5.3.6 IL-8含量测定 | 第65页 |
5.3.7 RNA的提取和反转录 | 第65页 |
5.3.8 荧光实时定量PCR | 第65页 |
5.3.9 蛋白免疫印迹(Westernblot,WB) | 第65-66页 |
5.3.10 数据分析 | 第66页 |
5.4 结果与讨论 | 第66-69页 |
5.4.1 虾青素顺反异构体在TNF-α诱导的Caco-2细胞中的抗炎活性 | 第66-67页 |
5.4.2 虾青素顺反异构体在TNF-α诱导的Caco-2细胞中细胞因子mRNA表达的影响 | 第67-68页 |
5.4.3 虾青素顺反异构体对NF-κB信号通路的影响 | 第68-69页 |
5.5 本章小结 | 第69-70页 |
第六章 叶黄素异构体的吸收代谢及抗氧化性质研究 | 第70-84页 |
6.1 引言 | 第70页 |
6.2 实验材料与仪器 | 第70-71页 |
6.2.1 材料与试剂 | 第70-71页 |
6.2.2 主要仪器 | 第71页 |
6.3 实验方法 | 第71-74页 |
6.3.1 叶黄素异构体的制备 | 第71页 |
6.3.2 叶黄素异构体的分析检测 | 第71页 |
6.3.3 叶黄素异构体的分离纯化 | 第71-72页 |
6.3.4 叶黄素异构体的鉴定 | 第72页 |
6.3.5 化学方法测定体外抗氧化活性 | 第72-73页 |
6.3.6 细胞培养及分化 | 第73页 |
6.3.7 细胞活力测定 | 第73页 |
6.3.8 体外模拟消化实验 | 第73-74页 |
6.3.9 Caco-2细胞对叶黄素异构体的吸收代谢 | 第74页 |
6.3.10 细胞内抗氧化活性(CAA)测定 | 第74页 |
6.3.11 统计分析 | 第74页 |
6.4 结果与讨论 | 第74-83页 |
6.4.1 叶黄素异构体的制备 | 第74-75页 |
6.4.2 叶黄素异构体的分离纯化与鉴定 | 第75-77页 |
6.4.3 叶黄素异构体的抗氧化活性比较 | 第77-79页 |
6.4.4 体外消化期间叶黄素异构体的结构组成变化 | 第79-81页 |
6.4.5 叶黄素异构体的生物可给率 | 第81页 |
6.4.6 Caco-2细胞对叶黄素异构体的吸收代谢 | 第81-82页 |
6.4.7 叶黄素异构体在细胞内的抗氧化活性 | 第82-83页 |
6.5 本章小结 | 第83-84页 |
主要结论及展望 | 第84-86页 |
论文创新点 | 第86-87页 |
致谢 | 第87-89页 |
参考文献 | 第89-100页 |
作者攻读博士期间成果清单 | 第100页 |