| 摘要 | 第5-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 绪论 | 第13-28页 |
| 1.1 黄酮类化合物的结构与分类和理化性质 | 第13-15页 |
| 1.1.1 黄酮类化合物的结构与分类 | 第13-14页 |
| 1.1.2 黄酮类化合物的理化性质 | 第14-15页 |
| 1.2 黄酮的生理功能及应用 | 第15-19页 |
| 1.2.1 黄酮的生理功能 | 第15-17页 |
| 1.2.2 黄酮类化合物的应用 | 第17-19页 |
| 1.3 黄酮化合物结构修饰的研究进展 | 第19-24页 |
| 1.3.1 糖基化修饰 | 第19-20页 |
| 1.3.2 去糖基化修饰 | 第20-24页 |
| 1.4 黄酮类化合物的全细胞催化修饰进展 | 第24-26页 |
| 1.4.1 全细胞催化 | 第24-25页 |
| 1.4.2 全细胞催化剂及其应用 | 第25-26页 |
| 1.5 本研究的主要内容和意义 | 第26-28页 |
| 第二章 可选择性催化芦丁水解反应的菌种筛选及其催化反应的研究 | 第28-47页 |
| 2.1 材料与方法 | 第29页 |
| 2.1.1 菌种 | 第29页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第29页 |
| 2.2 仪器与设备 | 第29-30页 |
| 2.3 实验方法 | 第30-34页 |
| 2.3.1 菌种培养方法 | 第30-31页 |
| 2.3.2 全细胞催化剂制备方法 | 第31页 |
| 2.3.3 微生物全细胞催化芦丁水解反应 | 第31页 |
| 2.3.4 反应初速度、底物转化率、区域选择性的计算 | 第31-32页 |
| 2.3.5 高效液相色谱（HPLC）分析 | 第32页 |
| 2.3.6 产物分离纯化与结构鉴定 | 第32页 |
| 2.3.7 反应时间对全细胞催化芦丁水解反应的影响 | 第32页 |
| 2.3.8 反应温度对全细胞催化芦丁水解反应的影响 | 第32-33页 |
| 2.3.9 缓冲体系pH对全细胞催化芦丁水解反应的影响 | 第33页 |
| 2.3.10 转速对全细胞催化芦丁水解反应的影响 | 第33页 |
| 2.3.11 底物与全细胞催化剂质量比对全细胞催化芦丁水解反应的影响 | 第33页 |
| 2.3.12 全细胞催化芦丁水解反应的操作稳定性 | 第33-34页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第34-46页 |
| 2.4.1 不同微生物全细胞在芦丁水解反应中的催化行为 | 第34-37页 |
| 2.4.2 全细胞催化芦丁水解反应的高效液相色谱分析 | 第37-38页 |
| 2.4.3 产物分离纯化与结构鉴定 | 第38-40页 |
| 2.4.4 黑曲霉全细胞催化芦丁水解的反应历程 | 第40-41页 |
| 2.4.5 反应温度对黑曲霉全细胞催化芦丁水解反应的影响 | 第41-42页 |
| 2.4.6 缓冲体系pH对黑曲霉全细胞催化芦丁水解反应的影响 | 第42-44页 |
| 2.4.7 反应体系转速对黑曲霉全细胞催化芦丁水解反应的影响 | 第44页 |
| 2.4.8 底物与全细胞催化剂质量比对全细胞催化芦丁水解反应的影响 | 第44-45页 |
| 2.4.9 黑曲霉全细胞催化芦丁水解反应的操作稳定性 | 第45-46页 |
| 2.5 本章小结 | 第46-47页 |
| 第三章 培养条件对黑曲霉细胞催化芦丁水解反应的影响 | 第47-67页 |
| 3.1 材料与方法 | 第47页 |
| 3.1.1 菌种 | 第47页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第47页 |
| 3.2 仪器与设备 | 第47-48页 |
| 3.3 实验方法 | 第48-51页 |
| 3.3.1 菌种培养方法 | 第48页 |
| 3.3.2 全细胞催化剂制备方法 | 第48页 |
| 3.3.3 黑曲霉全细胞催化芦丁水解的反应 | 第48页 |
| 3.3.4 荧光定量PCR | 第48-51页 |
| 3.3.5 反应初速度、底物转化率、区域选择性计算 | 第51页 |
| 3.3.6 高效液相色谱（HPLC）分析 | 第51页 |
| 3.3.7 黑曲霉细胞生物量的计算 | 第51页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第51-65页 |
| 3.4.1 不同种类碳源对黑曲霉生物量及催化芦丁水解反应的影响 | 第51-52页 |
| 3.4.2 不同浓度柚皮苷对黑曲霉生物量及催化芦丁水解反应的影响 | 第52-53页 |
| 3.4.3 黑曲霉中芦丁-α-鼠李糖苷酶、α-鼠李糖苷酶、β-葡萄糖苷酶基因表达量分析 | 第53-56页 |
| 3.4.4 不同氮源对黑曲霉生物量及催化芦丁水解反应的影响 | 第56-57页 |
| 3.4.5 不同浓度酵母膏对黑曲霉生物量及催化芦丁水解反应的影响 | 第57-58页 |
| 3.4.6 不同种类表面活性剂对黑曲霉生物量及催化芦丁水解反应的影响 | 第58-59页 |
| 3.4.7 不同浓度Triton X-100对黑曲霉生物量及催化芦丁水解反应的影响 | 第59-60页 |
| 3.4.8 不同初始发酵pH值对黑曲霉生物量及催化芦丁水解反应的影响 | 第60-62页 |
| 3.4.9 不同发酵温度对黑曲霉生物量及催化芦丁水解反应的影响 | 第62页 |
| 3.4.10 不同发酵时间对黑曲霉生物量及催化芦丁水解反应的影响 | 第62-63页 |
| 3.4.11 不同发酵转速对黑曲霉生物量及催化芦丁水解反应的影响 | 第63-64页 |
| 3.4.12 验证试验 | 第64-65页 |
| 3.5 本章小结 | 第65-67页 |
| 第四章 不同溶剂体系中黑曲霉催化柚皮苷水解反应的研究 | 第67-77页 |
| 4.1 实验材料 | 第67-68页 |
| 4.1.1 菌种 | 第67-68页 |
| 4.1.2 主要试剂 | 第68页 |
| 4.2 仪器与设备 | 第68页 |
| 4.3 实验方法 | 第68-70页 |
| 4.3.1 菌种培养方法 | 第68页 |
| 4.3.2 全细胞催化剂制备方法 | 第68页 |
| 4.3.3 底物转化率、产物选择性计算 | 第68页 |
| 4.3.4 高效液相色谱（HPLC）分析 | 第68页 |
| 4.3.5 不同溶剂对黑曲霉全细胞催化柚皮苷水解反应的影响 | 第68-69页 |
| 4.3.6 不同pH对[Bmin]BF_4和[Emim]BF_4体系中黑曲霉全细胞催化柚皮水解反应的影响 | 第69页 |
| 4.3.7 不同温度对[Bmim]BF_4和[Emim]BF_4体系中黑曲霉全细胞催化柚皮苷水解反应的影响 | 第69页 |
| 4.3.8 不同转速对[Bmim]BF_4和[Emim]BF_4体系中黑曲霉全细胞催化柚皮苷水解反应的影响 | 第69-70页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第70-76页 |
| 4.4.1 不同溶剂对黑曲霉全细胞催化柚皮苷水解反应的影响 | 第70-71页 |
| 4.4.2 不同pH对[Bmim]BF_4和[Emim]BF_4体系中黑曲霉全细胞催化柚皮苷水解反应的影响 | 第71-73页 |
| 4.4.3 不同温度对[Bmim]BF_4和[Emim]BF_4体系中黑曲霉全细胞催化柚皮苷水解反应的影响 | 第73-75页 |
| 4.4.4 不同转速对[Bmim]BF_4和[Emim]BF_4体系中黑曲霉全细胞催化柚皮苷水解反应的影响 | 第75-76页 |
| 4.5 本章小结 | 第76-77页 |
| 结论与展望 | 第77-80页 |
| 参考文献 | 第80-92页 |
| 攻读硕士学位期间取得的研究成果 | 第92-94页 |
| 致谢 | 第94-96页 |
| 附件 | 第96页 |
