| 摘要 | 第15-18页 |
| ABSTRACT | 第18-21页 |
| 缩写符号 | 第22-24页 |
| 前言 | 第24-26页 |
| 第一章 文献综述 | 第26-48页 |
| 1 FOs研究进展 | 第26-30页 |
| 1.1 FOs的来源与制备方法 | 第26-28页 |
| 1.1.1 FOs的物理法制备 | 第26页 |
| 1.1.2 FOs的化学法制备 | 第26-27页 |
| 1.1.3 FOs的生物酶法制备 | 第27页 |
| 1.1.4 生物发酵法制备 | 第27-28页 |
| 1.2 FOs结构 | 第28-29页 |
| 1.3 FOs的生物活性 | 第29-30页 |
| 2 麦麸的研究进展 | 第30-32页 |
| 2.1 麦麸的结构 | 第30页 |
| 2.2 麦麸的组成 | 第30-31页 |
| 2.3 麦麸的利用 | 第31-32页 |
| 2.3.1 生产功能性低聚糖 | 第31页 |
| 2.3.2 生产膳食纤维 | 第31-32页 |
| 2.3.3 生产酶制剂和乙醇 | 第32页 |
| 2.3.4 作为食品辅料使用 | 第32页 |
| 3 出芽短梗霉研究进展 | 第32-36页 |
| 3.1 出芽短梗霉简介 | 第32-33页 |
| 3.2 出芽短梗霉的应用 | 第33-36页 |
| 3.2.1 制备短梗霉多糖 | 第33页 |
| 3.2.2 生产淀粉酶 | 第33-34页 |
| 3.2.3 生产纤维素酶 | 第34页 |
| 3.2.4 生产脂肪酶 | 第34-35页 |
| 3.2.5 生产碱性蛋白酶 | 第35页 |
| 3.2.6 生产木聚糖酶 | 第35页 |
| 3.2.7 生物防治 | 第35-36页 |
| 4 本研究的目的意义及主要研究内容 | 第36-38页 |
| 4.1 本研究目的和意义 | 第36-37页 |
| 4.2 本研究主要内容 | 第37-38页 |
| 参考文献 | 第38-48页 |
| 第二章 发酵麦麸制备FOs菌株的筛选与鉴定 | 第48-64页 |
| 1 材料与方法 | 第48-51页 |
| 1.1 试验材料 | 第48页 |
| 1.2 主要试剂 | 第48-49页 |
| 1.3 主要仪器 | 第49页 |
| 1.4 麦麸的预处理 | 第49页 |
| 1.5 培养基 | 第49-50页 |
| 1.6 菌种筛选 | 第50页 |
| 1.6.1 菌种采集 | 第50页 |
| 1.6.2 菌种初筛 | 第50页 |
| 1.6.3 菌种复筛 | 第50页 |
| 1.7 FOs含量测定 | 第50页 |
| 1.8 菌种形态观察 | 第50-51页 |
| 1.9 菌株的分子生物学鉴定 | 第51页 |
| 1.10 麦麸发酵前后的扫描电镜观察 | 第51页 |
| 1.11 数据统计与分析 | 第51页 |
| 2 结果与分析 | 第51-58页 |
| 2.1 菌种筛选 | 第51-54页 |
| 2.1.1 菌株的筛选及分离 | 第51-53页 |
| 2.1.2 菌株的复筛 | 第53-54页 |
| 2.2 菌株2012的鉴定 | 第54-57页 |
| 2.2.1 菌株的形态观察 | 第54页 |
| 2.2.2 菌株的分子生物学鉴定 | 第54-57页 |
| 2.3 出芽短梗霉发酵前后麦麸结构的变化 | 第57-58页 |
| 3 讨论 | 第58-59页 |
| 4 本章小结 | 第59-60页 |
| 参考文献 | 第60-64页 |
| 第三章 出芽短梗霉发酵麦麸制备FOs的营养条件研究 | 第64-82页 |
| 1 材料与方法 | 第64-68页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第64-65页 |
| 1.1.1 试验材料 | 第64页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第64-65页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第65页 |
| 1.3 试验方法 | 第65-66页 |
| 1.3.1 麦麸液制备工艺 | 第65页 |
| 1.3.2 培养基制备 | 第65-66页 |
| 1.3.3 菌种培养 | 第66页 |
| 1.4 酶活性测定 | 第66-67页 |
| 1.4.1 木聚糖酶活性测定 | 第66-67页 |
| 1.4.2 FAE活性测定 | 第67页 |
| 1.4.3 木糖糖苷酶活性测定 | 第67页 |
| 1.4.4 阿拉伯糖苷酶活性测定 | 第67页 |
| 1.4.5 酶单位定义 | 第67页 |
| 1.5 FOs含量测定 | 第67-68页 |
| 1.6 其它指标测定 | 第68页 |
| 1.7 数据统计与分析 | 第68页 |
| 2 结果与分析 | 第68-76页 |
| 2.1 不同碳源对出芽短梗霉产酶及制备FOs的影响 | 第68-70页 |
| 2.2 麦麸成分分析及麦麸液浓度对Xyln活性和FOs制备的影响 | 第70-71页 |
| 2.3 复配碳源对Xyln活性和FOs制备的影响 | 第71-73页 |
| 2.4 复配氮源对Xyln活性和FOs制备的影响 | 第73页 |
| 2.5 复配金属离子对Xyln活性和FOs制备的影响 | 第73-74页 |
| 2.6 复配表面活性剂对Xyln活性和FOs制备的影响 | 第74-75页 |
| 2.7 正交试验结果分析 | 第75-76页 |
| 3 讨论 | 第76-78页 |
| 4 本章小结 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-82页 |
| 第四章 出芽短梗霉发酵麦麸制备FOs的发酵工艺优化研究 | 第82-100页 |
| 1 材料与方法 | 第82-86页 |
| 1.1 材料与试剂 | 第82-83页 |
| 1.1.1 试验材料 | 第82页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第82-83页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第83页 |
| 1.3 试验方法 | 第83-85页 |
| 1.3.1 麦麸液制备工艺 | 第83页 |
| 1.3.2 培养基制备 | 第83页 |
| 1.3.3 菌种培养 | 第83页 |
| 1.3.4 FOs发酵条件优化试验 | 第83-85页 |
| 1.3.5 两段式变温变pH联合调控发酵FOs工艺研究 | 第85页 |
| 1.4 测定指标与方法 | 第85页 |
| 1.5 数据统计与分析 | 第85-86页 |
| 2 结果与分析 | 第86-95页 |
| 2.1 FOs发酵条件优化研究 | 第86-91页 |
| 2.1.1 Plackett-Burman实验结果分析 | 第86-87页 |
| 2.1.2 D-optimal实验设计结果分析 | 第87-90页 |
| 2.1.3 验证性试验 | 第90-91页 |
| 2.2 制备FOs的两段式变温变pH联合调控发酵工艺研究 | 第91-95页 |
| 2.2.1 起始pH对出芽短梗霉产Xyln和FOs的影响 | 第91页 |
| 2.2.2 温度对出芽短梗霉产Xyln和FOs的影响 | 第91-92页 |
| 2.2.3 变温变pH联合调控发酵FOs工艺研究 | 第92-95页 |
| 3 讨论 | 第95-97页 |
| 4 本章小结 | 第97-98页 |
| 参考文献 | 第98-100页 |
| 第五章 出芽短梗霉发酵麦麸制备的FOs结构研究 | 第100-122页 |
| 1 材料与方法 | 第100-103页 |
| 1.1 试验材料 | 第100-101页 |
| 1.2 主要试剂 | 第101页 |
| 1.3 主要仪器 | 第101页 |
| 1.4 实验方法 | 第101-103页 |
| 1.4.1 FOs的分离 | 第101-102页 |
| 1.4.2 FOs组成分析 | 第102页 |
| 1.4.3 FOs紫外光谱分析 | 第102页 |
| 1.4.4 FOs红外图谱分析 | 第102页 |
| 1.4.5 FOs液相色谱电喷雾质谱分析 | 第102-103页 |
| 2 结果与分析 | 第103-117页 |
| 2.1 FOs的分离及组成分析 | 第103-106页 |
| 2.1.1 FOs组成的气相色谱分析 | 第103-105页 |
| 2.1.2 FOs组成的高效液相色谱分析 | 第105-106页 |
| 2.2 FOs的紫外光谱分析 | 第106-107页 |
| 2.3 FOs的红外光谱分析 | 第107-108页 |
| 2.4 FOs的液相色谱电喷雾质谱分析 | 第108-117页 |
| 2.4.1 一段式调控温度和pH发酵FOs的液相色谱电喷雾质谱分析 | 第108-113页 |
| 2.4.2 二段式联合调控温度和pH发酵FOs的液相色谱电喷雾质谱分析 | 第113-117页 |
| 3 讨论 | 第117-118页 |
| 4 本章小结 | 第118-120页 |
| 参考文献 | 第120-122页 |
| 第六章 FOs抗氧化和抗肿瘤活性研究 | 第122-146页 |
| 1 材料与方法 | 第122-128页 |
| 1.1 试验材料 | 第122-123页 |
| 1.1.1 菌株与细胞 | 第122页 |
| 1.1.2 瘤株 | 第122页 |
| 1.1.3 受试药物 | 第122页 |
| 1.1.4 阳性药物 | 第122-123页 |
| 1.1.5 动物 | 第123页 |
| 1.2 主要试剂 | 第123页 |
| 1.3 主要仪器 | 第123页 |
| 1.4 FOs体外抗氧化性试验 | 第123-125页 |
| 1.4.1 FOs对大鼠红细胞(RBC)氧化溶血的影响 | 第123-124页 |
| 1.4.2 FOs对大鼠肝组织匀浆体外生成MDA的影响试验 | 第124页 |
| 1.4.3 FOs对大鼠肝线粒体脂质过氧化的影响试验 | 第124-125页 |
| 1.5 FOs体内抗氧化性研究 | 第125页 |
| 1.5.1 S_(180)肿瘤小鼠模型制备 | 第125页 |
| 1.5.2 实验动物分组及药试 | 第125页 |
| 1.5.3 体内抗氧化活性检测 | 第125页 |
| 1.6 FOs体外抗肿瘤活性研究 | 第125-126页 |
| 1.6.1 受试药物的配制 | 第125-126页 |
| 1.6.2 肿瘤细胞株的培养 | 第126页 |
| 1.6.3 细胞生长抑制实验 | 第126页 |
| 1.6.4 FOs对肿瘤细胞损伤作用 | 第126页 |
| 1.7 FOs体内抗肿瘤活性研究 | 第126-128页 |
| 1.7.1 S_(180)肿瘤小鼠模型制备 | 第126页 |
| 1.7.2 实验动物分组及药试 | 第126-127页 |
| 1.7.3 体内抗肿瘤活性指标分析 | 第127-128页 |
| 1.8 数据统计与分析 | 第128页 |
| 2 结果与分析 | 第128-141页 |
| 2.1 FOs的体外抗氧化研究 | 第128-131页 |
| 2.1.1 FOs对红细胞(RBC)溶血的影响 | 第128-129页 |
| 2.1.2 FOs对大鼠肝组织匀浆体外生成MDA的影响 | 第129-130页 |
| 2.1.3 FOs对大鼠肝线粒体脂质过氧化的影响 | 第130-131页 |
| 2.2 FOs对S_(180)荷瘤小鼠体内抗氧化活性的影响 | 第131-132页 |
| 2.3 FOs体外抗肿瘤活性研究 | 第132-137页 |
| 2.3.1 FOs对细胞株生长抑制作用 | 第132页 |
| 2.3.2 FOs对细胞株损伤作用 | 第132-137页 |
| 2.4 FOs体内抗肿瘤活性研究 | 第137-141页 |
| 2.4.1 FOs对体内S_(180)肉瘤生长的影响 | 第137页 |
| 2.4.2 肿瘤组织病理学观察 | 第137-140页 |
| 2.4.3 FOs对荷瘤小鼠免疫器官的影响 | 第140-141页 |
| 2.4.4 FOs对细胞因子的影响 | 第141页 |
| 3 讨论 | 第141-143页 |
| 4 本章小结 | 第143-144页 |
| 参考文献 | 第144-146页 |
| 全文结论 | 第146-148页 |
| 创新点 | 第148-150页 |
| 致谢 | 第150-152页 |
| 攻读博士期间发表论文、申请专利与科研项目 | 第152页 |
