摘要 | 第4-6页 |
ABSTRACT | 第6-7页 |
缩略词及中文对照 | 第12-14页 |
1 绪论 | 第14-24页 |
1.1 大米活性肽的生理功能及研究现状 | 第14-16页 |
1.1.1 大米活性肽的种类 | 第14页 |
1.1.2 大米活性肽的生理功能 | 第14-15页 |
1.1.3 大米活性肽的研究现状 | 第15-16页 |
1.2 内皮细胞氧化损伤机制及其信号通路 | 第16-19页 |
1.2.1 H_2O_2引起的内皮细胞氧化损伤机制及其信号通路 | 第16-17页 |
1.2.2 高糖引起的内皮细胞氧化损伤机制及其信号通路 | 第17页 |
1.2.3 低密度脂蛋白引起的内皮细胞氧化损伤机制及其信号通路 | 第17-18页 |
1.2.4 其他因素引起的内皮细胞氧化损伤机制及其信号通路 | 第18-19页 |
1.3 NF-κB信号通路研究进展 | 第19-22页 |
1.3.1 信号通路 | 第19页 |
1.3.2 NF-κB信号通路 | 第19-21页 |
1.3.3 NF-κB信号通路的研究进展 | 第21-22页 |
1.4 本课题的立题依据和意义 | 第22-23页 |
1.5 本课题的具体研究内容 | 第23-24页 |
2 材料和方法 | 第24-42页 |
2.1 试剂和材料 | 第24-29页 |
2.1.1 细胞系 | 第24页 |
2.1.2 主要试剂 | 第24-26页 |
2.1.3 试剂配制 | 第26-27页 |
2.1.4 主要仪器 | 第27-29页 |
2.2 实验方法 | 第29-41页 |
2.2.1 大米活性肽的制备 | 第29页 |
2.2.2 氧化损伤模型的建立 | 第29-30页 |
2.2.3 RBP对人脐静脉血管内皮细胞生存活力的影响 | 第30-31页 |
2.2.4 RBP处理前后氧化损伤人脐静脉血管内皮细胞生长曲线的测定 | 第31-32页 |
2.2.5 细胞全蛋白的提取及蛋白含量的测定 | 第32-34页 |
2.2.6 蛋白免疫印迹检测方法 | 第34-35页 |
2.2.7 RBP对氧化损伤内皮细胞NF-κB表达的WB检测 | 第35-36页 |
2.2.8 RBP对氧化损伤内皮细胞p-NF-κB表达的WB检测 | 第36-37页 |
2.2.9 RBP对氧化损伤内皮细胞p38MAPK表达的WB检测 | 第37-38页 |
2.2.10 RBP对氧化损伤内皮细胞p-p38MAPK表达的WB检测 | 第38-39页 |
2.2.11 RBP对氧化损伤内皮细胞Ikkβ表达的WB检测 | 第39-40页 |
2.2.12 RBP对氧化损伤内皮细胞p-Ikkβ表达的WB检测 | 第40-41页 |
2.3 凝胶图像分析 | 第41页 |
2.4 统计分析 | 第41-42页 |
3 实验结果 | 第42-56页 |
3.1 不同浓度、时间处理下H_2O_2对HUVEC生存活力的影响 | 第42-43页 |
3.2 不同浓度、时间处理下RBP对HUVEC生存活力的影响 | 第43-45页 |
3.3 不同浓度、时间处理下RBP对氧化损伤HUVEC生存活力的影响 | 第45-46页 |
3.4 RBP对氧化损伤内皮细胞NF-κB表达的影响 | 第46-48页 |
3.5 RBP对氧化损伤内皮细胞p-NF-κB表达的影响 | 第48-49页 |
3.6 RBP对氧化损伤内皮细胞p38MAPK表达的影响 | 第49-51页 |
3.7 RBP对氧化损伤内皮细胞p-p38MAPK表达的影响 | 第51-52页 |
3.8 RBP对氧化损伤内皮细胞IKKβ表达的影响 | 第52-53页 |
3.9 RBP对氧化损伤内皮细胞p-IKKβ表达的影响 | 第53-56页 |
4 实验讨论 | 第56-62页 |
4.1 RBP对氧化损伤内皮细胞NF-κB、p-NF-κB表达的影响 | 第56-57页 |
4.2 RBP对氧化损伤内皮细胞p38MAPK、p-p38MAPK表达的影响 | 第57-59页 |
4.3 RBP对氧化损伤内皮细胞IKKβ、p-IKKβ表达的影响 | 第59-60页 |
4.4 RBP对氧化损伤内皮细胞NF-κB信号通路的影响机制 | 第60-62页 |
5 结论 | 第62-63页 |
6 展望 | 第63-64页 |
7 课题创新点 | 第64-66页 |
参考文献 | 第66-74页 |
攻读硕士学位期间的主要学术成果 | 第74-76页 |
致谢 | 第76页 |