| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-8页 |
| 主要符号表 | 第13-14页 |
| 第1章 前言 | 第14-33页 |
| 1.1 食物过敏概述 | 第14-15页 |
| 1.1.1 食物过敏反应 | 第14页 |
| 1.1.2 食物过敏原 | 第14-15页 |
| 1.2 食物过敏的发生机制 | 第15-21页 |
| 1.2.1 抗原呈递细胞 | 第16-17页 |
| 1.2.2 T淋巴细胞 | 第17-19页 |
| 1.2.3 B淋巴细胞 | 第19-20页 |
| 1.2.4 效应细胞 | 第20页 |
| 1.2.5 其它免疫细胞 | 第20-21页 |
| 1.2.6 肠道菌群 | 第21页 |
| 1.3 食物过敏的预防及治疗 | 第21-23页 |
| 1.3.1 食物过敏的预防 | 第21-22页 |
| 1.3.2 食物过敏的治疗 | 第22-23页 |
| 1.4 抗食物过敏的研究模型 | 第23-24页 |
| 1.4.1 体外细胞模型 | 第23页 |
| 1.4.2 体内动物模型 | 第23-24页 |
| 1.5 天然活性物质的抗食物过敏活性 | 第24-29页 |
| 1.5.1 益生菌 | 第24页 |
| 1.5.2 陆生植物来源活性物质 | 第24-25页 |
| 1.5.3 海洋来源活性物质 | 第25-29页 |
| 1.6 本研究的目的意义及主要内容 | 第29-33页 |
| 1.6.1 研究目的及意义 | 第29-30页 |
| 1.6.2 主要研究内容 | 第30-32页 |
| 1.6.3 技术路线 | 第32-33页 |
| 第2章 龙须菜硫酸寡糖的抗食物过敏活性 | 第33-87页 |
| 2.1 引言 | 第33-34页 |
| 2.2 材料 | 第34-36页 |
| 2.2.1 原材料 | 第34页 |
| 2.2.2 细胞及小鼠 | 第34页 |
| 2.2.3 主要仪器设备 | 第34-35页 |
| 2.2.4 主要试剂 | 第35页 |
| 2.2.5 实验所用溶液及配制方法 | 第35-36页 |
| 2.3 方法 | 第36-44页 |
| 2.3.1 龙须菜硫酸多糖的降解处理 | 第36-37页 |
| 2.3.2 龙须菜硫酸寡糖的性质分析 | 第37-39页 |
| 2.3.3 体外抗过敏细胞模型 | 第39-40页 |
| 2.3.4 OVA诱导的小鼠食物过敏模型 | 第40-43页 |
| 2.3.5 脾脏效应T细胞及调节性T细胞的分选 | 第43页 |
| 2.3.6 调节性T细胞与效应细胞共培养 | 第43-44页 |
| 2.3.7 统计分析 | 第44页 |
| 2.4 结果与分析 | 第44-79页 |
| 2.4.1 GLSP的降解及产物的性质分析 | 第44-46页 |
| 2.4.2 GLSO的组成及转运分析 | 第46-47页 |
| 2.4.3 GLSO对RBL-2H3细胞激活的影响 | 第47-48页 |
| 2.4.4 GLSO对BMMCs激活的影响 | 第48页 |
| 2.4.5 GLSO对BMDCs过敏原吞噬功能的影响 | 第48-50页 |
| 2.4.6 GLSO对OVA致敏小鼠过敏症状的影响 | 第50-52页 |
| 2.4.7 GLSO对OVA致敏小鼠空肠炎症的影响 | 第52-55页 |
| 2.4.8 GLSO对OVA致敏小鼠肠道微生物的影响 | 第55-64页 |
| 2.4.9 GLSO对OVA致敏小鼠特异性抗体、炎症介质及细胞因子的影响 | 第64-68页 |
| 2.4.10 GLSO对OVA致敏小鼠脾脏淋巴细胞增殖的影响 | 第68-77页 |
| 2.4.11 GLSO诱导的Treg细胞的免疫抑制作用 | 第77-79页 |
| 2.5 讨论 | 第79-87页 |
| 2.5.1 GLSO的制备及转运 | 第80-81页 |
| 2.5.2 GLSO的体外抗过敏活性 | 第81-82页 |
| 2.5.3 GLSO对OVA致敏小鼠过敏反应的影响 | 第82-83页 |
| 2.5.4 GLSO对OVA致敏小鼠肠道菌群的影响 | 第83-84页 |
| 2.5.5 GLSO对OVA致敏小鼠免疫细胞的影响 | 第84-85页 |
| 2.5.6 GLSO诱导的Treg细胞的免疫抑制作用 | 第85-87页 |
| 第3章 深海真菌来源butyrolactone-Ⅰ的抗食物过敏活性 | 第87-124页 |
| 3.1 引言 | 第87-88页 |
| 3.2 材料 | 第88-89页 |
| 3.2.1 海洋微生物来源化合物 | 第88页 |
| 3.2.2 细胞及小鼠 | 第88页 |
| 3.2.3 主要仪器设备 | 第88页 |
| 3.2.4 主要试剂 | 第88-89页 |
| 3.2.5 实验所用溶液及配制方法 | 第89页 |
| 3.3 方法 | 第89-95页 |
| 3.3.1 海洋微生物来源化合物抗过敏活性的大规模筛选 | 第89-90页 |
| 3.3.2 深海真菌来源BTL-Ⅰ的制备 | 第90页 |
| 3.3.3 体外抗过敏细胞模型 | 第90-91页 |
| 3.3.4 OVA诱导的小鼠食物过敏模型 | 第91-92页 |
| 3.3.5 小鼠被动皮肤过敏反应模型 | 第92-93页 |
| 3.3.6 BTL-Ⅰ与FcγRⅡB的分子对接 | 第93-94页 |
| 3.3.7 HMC-1细胞FcγRⅡB受体的基因敲低 | 第94-95页 |
| 3.3.8 IgE介导HMC-1细胞的组胺检测 | 第95页 |
| 3.3.9 统计分析 | 第95页 |
| 3.4 结果与分析 | 第95-117页 |
| 3.4.1 海洋微生物来源化合物的抗过敏活性筛选 | 第95-96页 |
| 3.4.2 BTL-Ⅰ的分离纯化及结构解析 | 第96-97页 |
| 3.4.3 BTL-Ⅰ对 RBL-2H3 细胞激活的影响 | 第97-98页 |
| 3.4.4 BTL-Ⅰ对BMMCs激活及c-KIT表达的影响 | 第98-102页 |
| 3.4.5 BTL-Ⅰ对OVA致敏小鼠过敏症状的影响 | 第102-103页 |
| 3.4.6 BTL-Ⅰ对OVA致敏小鼠空肠炎症的影响 | 第103-104页 |
| 3.4.7 BTL-Ⅰ对OVA致敏小鼠特异性抗体及过敏介质的影响 | 第104-106页 |
| 3.4.8 BTL-Ⅰ对OVA致敏小鼠脾脏淋巴细胞增殖的影响 | 第106-108页 |
| 3.4.9 BTL-Ⅰ对OVA致敏小鼠肠系膜淋巴细胞增殖的影响 | 第108-110页 |
| 3.4.10 BTL-Ⅰ对小鼠被动皮肤过敏反应的影响 | 第110-112页 |
| 3.4.11 BTL-Ⅰ与FcγRⅡB的分子对接 | 第112-114页 |
| 3.4.12 BTL-Ⅰ对HMC-1 细胞激活的影响 | 第114-117页 |
| 3.5 讨论 | 第117-124页 |
| 3.5.1 海洋微生物来源化合物抗过敏活性的筛选 | 第118页 |
| 3.5.2 BTL-Ⅰ的体外抗过敏活性 | 第118-119页 |
| 3.5.3 BTL-Ⅰ对OVA致敏小鼠过敏反应的影响 | 第119-120页 |
| 3.5.4 BTL-Ⅰ对OVA致敏小鼠免疫细胞的影响 | 第120-121页 |
| 3.5.5 BTL-Ⅰ对B细胞及肥大细胞的抑制作用 | 第121-122页 |
| 3.5.6 BTL-Ⅰ结构与活性的分析 | 第122-124页 |
| 第4章 结论与展望 | 第124-127页 |
| 致谢 | 第127-128页 |
| 参考文献 | 第128-142页 |
| 附录 | 第142-172页 |
| 在学期间取得的研究成果 | 第172页 |
