| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 第一章 绪论 | 第9-16页 |
| 1.1 引言 | 第9页 |
| 1.2 亚硝酸盐的作用及危害 | 第9-11页 |
| 1.2.1 亚硝酸盐的作用 | 第9-10页 |
| 1.2.2 亚硝酸盐的危害 | 第10-11页 |
| 1.3 亚硝酸盐的降解方法 | 第11-13页 |
| 1.3.1 物理降解方法 | 第11页 |
| 1.3.2 化学降解方法 | 第11-12页 |
| 1.3.3 生物降解方法 | 第12-13页 |
| 1.4 乳酸菌在食品发酵中应用 | 第13-14页 |
| 1.4.1 乳酸菌的生理功能 | 第13页 |
| 1.4.2 乳酸菌降解亚硝酸盐的机理 | 第13页 |
| 1.4.3 乳酸菌复合发酵剂的研究进展 | 第13-14页 |
| 1.5 本课题研究意义及内容 | 第14-16页 |
| 第二章 降解亚硝酸盐乳酸菌的筛选鉴定及其特性研究 | 第16-27页 |
| 2.1 引言 | 第16页 |
| 2.2 实验材料与设备 | 第16-17页 |
| 2.2.1 实验材料与试剂 | 第16页 |
| 2.2.2 实验仪器与设备 | 第16-17页 |
| 2.3 实验方法 | 第17-19页 |
| 2.3.1 乳酸菌的分离纯化 | 第17页 |
| 2.3.2 乳酸菌的分子生物学鉴定 | 第17页 |
| 2.3.3 乳酸菌的生长曲线及其产酸特性 | 第17-18页 |
| 2.3.4 乳酸菌的耐酸特性 | 第18页 |
| 2.3.5 乳酸菌对氯化钠的耐受特性 | 第18页 |
| 2.3.6 乳酸菌对亚硝酸盐的耐受特性 | 第18页 |
| 2.3.7 乳酸菌的生长温度 | 第18页 |
| 2.3.8 菌种间的拮抗作用 | 第18页 |
| 2.3.9 乳酸菌对亚硝酸盐的降解 | 第18页 |
| 2.3.10 亚硝酸盐测定方法 | 第18-19页 |
| 2.4 结果与分析 | 第19-26页 |
| 2.4.1 乳酸菌的分离纯化及初步鉴定 | 第19页 |
| 2.4.2 乳酸菌的分子生物学鉴定 | 第19-20页 |
| 2.4.3 乳酸菌的生长曲线及其产酸特性 | 第20-21页 |
| 2.4.4 乳酸菌的耐酸特性 | 第21-22页 |
| 2.4.5 乳酸菌对氯化钠的耐受特性 | 第22-23页 |
| 2.4.6 乳酸菌对亚硝酸盐的耐受特性 | 第23页 |
| 2.4.7 乳酸菌的生长温度 | 第23-24页 |
| 2.4.8 菌种间的拮抗作用 | 第24-25页 |
| 2.4.9 乳酸菌对亚硝酸盐的降解 | 第25-26页 |
| 2.5 本章小结 | 第26-27页 |
| 第三章 乳酸菌复合发酵剂的制备及其在腌制草鱼中的应用 | 第27-45页 |
| 3.1 引言 | 第27页 |
| 3.2 实验材料与设备 | 第27-28页 |
| 3.2.1 实验材料与试剂 | 第27页 |
| 3.2.2 实验仪器与设备 | 第27-28页 |
| 3.3 实验方法 | 第28-30页 |
| 3.3.1 乳酸菌复合发酵剂的制备 | 第28-29页 |
| 3.3.2 腌鱼工艺 | 第29页 |
| 3.3.3 发酵温度和时间对鱼肉中亚硝酸盐、组胺和TVB-N的影响 | 第29页 |
| 3.3.4 发酵剂接种量和时间对鱼肉中亚硝酸盐、组胺和TVB-N的影响 | 第29页 |
| 3.3.5 测定方法及数据分析 | 第29页 |
| 3.3.6 挥发性风味物质的测定 | 第29-30页 |
| 3.4 结果与分析 | 第30-43页 |
| 3.4.1 微生物复合发酵剂的制备 | 第30-31页 |
| 3.4.2 发酵温度、时间和接种量对鱼肉中亚硝酸盐的影响 | 第31-32页 |
| 3.4.3 发酵温度、时间和接种量对鱼肉中组胺的影响 | 第32-33页 |
| 3.4.4 发酵温度、时间和接种量对鱼肉中TVB-N的影响 | 第33-35页 |
| 3.4.5 腌制鱼肉中挥发性风味物质变化 | 第35-43页 |
| 3.5 本章小结 | 第43-45页 |
| 第四章 亚硝酸盐还原酶的克隆表达及酶活测定 | 第45-54页 |
| 4.1 引言 | 第45页 |
| 4.2 实验材料与设备 | 第45-46页 |
| 4.2.1 实验材料与试剂 | 第45-46页 |
| 4.2.2 实验仪器与设备 | 第46页 |
| 4.3 实验方法 | 第46-49页 |
| 4.3.1 重组表达质粒pET30a-NiR的构建 | 第46-48页 |
| 4.3.2 NiR目的基因与pET30a(+)表达载体连接产物的转化 | 第48页 |
| 4.3.3 重组菌E.coliBL21(DE3,pET30a-NiR)的验证 | 第48页 |
| 4.3.4 NiR在大肠杆菌中的诱导表达 | 第48-49页 |
| 4.3.5 重组蛋白纯化及其SDS-PAGE电泳 | 第49页 |
| 4.3.6 NiR酶活测定 | 第49页 |
| 4.4 结果与分析 | 第49-53页 |
| 4.4.1 NiR目的基因的PCR扩增 | 第49-50页 |
| 4.4.2 重组菌E.coliBL21(DE3,pET30a-NiR)的验证 | 第50-51页 |
| 4.4.3 重组蛋白SDS-PAGE电泳 | 第51-52页 |
| 4.4.4 NiR酶活测定 | 第52-53页 |
| 4.5 本章小结 | 第53-54页 |
| 主要结论与展望 | 第54-56页 |
| 主要结论 | 第54页 |
| 展望 | 第54-56页 |
| 致谢 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-65页 |
| 附录1：作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第65-66页 |
| 附录2：基因测序结果 | 第66-70页 |
| 附录3：氨基酸序列比对结果 | 第70页 |
