摘要 | 第6-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
目录 | 第9-11页 |
第一章 引言 | 第11-23页 |
1.1 生物被膜的简介 | 第11-12页 |
1.1.1 生物被膜的危害 | 第11-12页 |
1.1.2 生物被膜与食品安全 | 第12页 |
1.2 单核细胞增生李斯特菌的简介 | 第12-13页 |
1.3 单核细胞增生李斯特菌生物被膜的形成过程和结构 | 第13-14页 |
1.4 单核细胞增生李斯特菌生物被膜形成的分子机制 | 第14-18页 |
1.4.1 鞭毛对Lm生物被膜形成的影响 | 第14-15页 |
1.4.2 细胞间交流对Lm生物被膜形成的影响 | 第15-16页 |
1.4.3 胞外基质对单核细胞增生李斯特菌生物被膜形成的影响 | 第16-17页 |
1.4.4 其他影响单核细胞增生李斯特菌生物被膜形成的分子因素 | 第17-18页 |
1.5 PrfA因子简介 | 第18-19页 |
1.6 PTS系统及CCR效应 | 第19-22页 |
1.6.1 葡萄糖代谢 | 第21页 |
1.6.2 纤维二糖代谢 | 第21页 |
1.6.3 甘油代谢 | 第21-22页 |
1.7 单核细胞增生李斯特菌蛋白质组学的研究 | 第22-23页 |
第二章 PrfA活性及碳源对单核细胞增生李斯特菌生物被膜形成的影响 | 第23-41页 |
2.1 实验材料 | 第23-25页 |
2.1.1 实验菌株 | 第23-24页 |
2.1.2 实验器材 | 第24页 |
2.1.3 药品 | 第24页 |
2.1.4 主要实验试剂 | 第24-25页 |
2.2 实验方法 | 第25-28页 |
2.2.1 菌株的活化 | 第25-26页 |
2.2.2 菌株的扩大培养 | 第26页 |
2.2.3 Lm生物被膜菌的制备 | 第26页 |
2.2.4 结晶紫染色法测定细菌生物被膜的以及数据处理 | 第26页 |
2.2.5 通过倒置显微镜观察Lm生物被膜的形态 | 第26页 |
2.2.6 荧光染色法观察单核细胞增生李斯特菌生物被膜的形态 | 第26-27页 |
2.2.7 电镜观察不同Lm生物被膜 | 第27-28页 |
2.3 实验结果 | 第28-37页 |
2.3.1 单核细胞增生李斯特菌EGDe生物被膜的形成与营养的关系 | 第28-29页 |
2.3.2 在营养丰富的BHI培养基中单核细胞增生李斯特菌野生菌株EGDe、EGDeAprfA、EGDeAprfA+pPrfA、EGDeAprfA+pPrfA~*、EGDe+pPrfA和EGDe+pPrfA~*生物被膜形成能力的比较 | 第29-30页 |
2.3.3 在以葡萄糖为唯一碳源的基础培养基中单核细胞增生李斯特菌野生菌株EGDe、EGDe△prfA、EGDe△prfA+pPrfA、EGDe△prfA+pPrfA~*、EGDe+pPrfA和EGDe+pPrfA~*生物被膜形成能力的比较 | 第30-32页 |
2.3.4 在以甘油为唯一碳源的基础培养基中单核细胞增生李斯特菌野生菌株EGDe、EGDe△prfA、EGDe△prfA+pPrfA、EGDe△prfA+pPrfA~*、EGDe+pPrfA和EGDe+pPrfA~*生物被膜形成能力的比较 | 第32-34页 |
2.3.5 在以纤维二糖为唯一碳源的基础培养基中单核细胞增生李斯特菌野生菌株EGDe、EGDe△prfA、EGDe△prfA+pPrfA、EGDe△prfA+pPrfA~*、EGDe+pPrfA和EGDe+pPrfA~*生物被膜形成能力的比较 | 第34-36页 |
2.3.6 电镜观察不同单核细胞增生李斯特菌生物被膜 | 第36-37页 |
2.4 讨论 | 第37-41页 |
第三章 蛋白组学研究碳代谢对单核细胞增生李斯特菌生物被膜形成机制的影响 | 第41-53页 |
3.1 实验材料 | 第41-43页 |
3.1.1 实验菌株以及培养液 | 第41页 |
3.1.2 主要试剂及其配制 | 第41-42页 |
3.1.3 主要仪器及软件 | 第42-43页 |
3.2 实验方法 | 第43-45页 |
3.2.1 菌体的培养与收集 | 第43页 |
3.2.2 单核细胞增生李斯特菌总蛋白的提取 | 第43页 |
3.2.3 蛋白样品浓度测定 | 第43-44页 |
3.2.4 双向电泳 | 第44页 |
3.2.5 差异点分析 | 第44-45页 |
3.3 结果 | 第45-51页 |
3.4 讨论 | 第51-53页 |
参考文献 | 第53-60页 |
攻读学位期间取得的研究成果 | 第60-61页 |
致谢 | 第61页 |