| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTACT | 第10-11页 |
| 简写对照表 | 第12-16页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-32页 |
| 1 蜂王浆、MRJPs及其功能特性 | 第16-21页 |
| 1.1 蜂王浆 | 第16页 |
| 1.2 蜂王浆的功能特性 | 第16-20页 |
| 1.2.1 蜂王浆降低酵母细胞氧化应激 | 第16-17页 |
| 1.2.2 蜂王浆介导线虫寿命延长 | 第17页 |
| 1.2.3 抗氧化作用 | 第17-18页 |
| 1.2.4 修复受损肌肉卫星细胞 | 第18页 |
| 1.2.5 改善神经系统功能 | 第18页 |
| 1.2.6 维持生殖系统的活力 | 第18页 |
| 1.2.7 调节免疫系统 | 第18-19页 |
| 1.2.8 蜂王浆介导蜜蜂寿命延长 | 第19-20页 |
| 1.3 蜂王浆中的关键活性成分——王浆主蛋白(MRJPs) | 第20页 |
| 1.4 MRJPs的功能特性 | 第20-21页 |
| 1.4.1 MRJPs介导果蝇抗衰老效应 | 第20页 |
| 1.4.2 MRJPs的抗氧化活性 | 第20-21页 |
| 1.4.3 MRJPs免疫调节活性 | 第21页 |
| 1.4.4 MRJPs与蜜蜂的学习记忆力显著相关 | 第21页 |
| 1.4.5 MRJPs的促细胞生殖活性 | 第21页 |
| 2 认知功能衰退与衰老 | 第21-22页 |
| 3 代谢组学 | 第22-23页 |
| 4 骨质疏松及其预防 | 第23-26页 |
| 4.1 补充碳酸盐对骨质疏松的影响 | 第23页 |
| 4.2 补钙对骨质疏松的影响 | 第23-24页 |
| 4.3 性激素对骨质疏松的影响 | 第24页 |
| 4.4 骨密度与Klotho信号通路 | 第24-25页 |
| 4.5 骨密度与CRY1和CRY2信号通路 | 第25-26页 |
| 5 长寿信号通路与衰老 | 第26-29页 |
| 5.1 雷帕酶素靶标(TOR)——保守的营养感受信号通路 | 第26-27页 |
| 5.2 TOR——传递不同胁迫信号的枢纽蛋白 | 第27页 |
| 5.3 TOR调节寿命 | 第27-29页 |
| 5.4 S6K与mTOR信号通路 | 第29页 |
| 6 本课题的研究背景、研究目的和研究内容 | 第29-32页 |
| 6.1 研究背景 | 第29-30页 |
| 6.2 研究目的 | 第30页 |
| 6.3 研究内容 | 第30-32页 |
| 第二章 MRJPs对自然衰老大鼠的抗衰老作用 | 第32-50页 |
| 1 引言 | 第32页 |
| 2 材料与方法 | 第32-36页 |
| 2.1 主要材料 | 第32页 |
| 2.2 主要仪器 | 第32-33页 |
| 2.3 实验方法 | 第33-36页 |
| 2.3.1 动物实验 | 第33页 |
| 2.3.2 大鼠体重及脏器指数 | 第33页 |
| 2.3.3 MRJPs蛋白质及氨基酸组成分析 | 第33-34页 |
| 2.3.4 组织形态学观察 | 第34页 |
| 2.3.5 抗氧化功能分析 | 第34页 |
| 2.3.6 Q-PCR检测衰老基因及TERT的表达 | 第34-36页 |
| 3 结果与讨论 | 第36-49页 |
| 3.1 MRJPs大鼠体重及脏器指数的影响 | 第36-37页 |
| 3.2 MRJPs蛋白质组成及氨基酸成分分析 | 第37-38页 |
| 3.3 病理形态学研究 | 第38-40页 |
| 3.4 抗氧化功能分析 | 第40-44页 |
| 3.5 MRJPs对衰老基因表达的影响 | 第44-46页 |
| 3.6 MRJPs对大鼠骨密度的影响 | 第46-49页 |
| 4 小结 | 第49-50页 |
| 第三章 MRJPs对记忆的改善及代谢组学分析 | 第50-66页 |
| 1 引言 | 第50页 |
| 2 材料与方法 | 第50-53页 |
| 2.1 主要材料 | 第50-51页 |
| 2.2 主要仪器 | 第51页 |
| 2.3 实验方法 | 第51-53页 |
| 2.3.1 实验动物模型的建立及给药方法 | 第51页 |
| 2.3.2 Morris水迷宫实验 | 第51-52页 |
| 2.3.3 尿液样本收集和样品制备 | 第52页 |
| 2.3.4 超高压液相色谱分析 | 第52页 |
| 2.3.5 质谱分析 | 第52-53页 |
| 3 结果与讨论 | 第53-64页 |
| 3.1 MRJPs对大鼠空间记忆的改善 | 第53-55页 |
| 3.2 代谢组学分析 | 第55-64页 |
| 3.2.1 UPLC/Q-TOFMS方法验证 | 第55-57页 |
| 3.2.2 MRJPs代谢模型分析 | 第57-58页 |
| 3.2.3 潜在生物标记物的鉴定 | 第58-62页 |
| 3.2.4 MRJPs干预效果的代谢组学分析 | 第62-64页 |
| 4 本章小结 | 第64-66页 |
| 第四章 MRJPs及碳酸氢钾协同干预对自然衰老大鼠骨密度的改善作用研究 | 第66-82页 |
| 1 引言 | 第66页 |
| 2 材料与方法 | 第66-68页 |
| 2.1 实验材料 | 第66页 |
| 2.1.1 试剂与材料 | 第66页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第66页 |
| 2.2 实验方法 | 第66-68页 |
| 2.2.1 动物实验 | 第66-67页 |
| 2.2.2 安全性评价 | 第67页 |
| 2.2.3 骨生化标记物的检测 | 第67页 |
| 2.2.4 尿钙及可滴定酸检测 | 第67页 |
| 2.2.5 抗氧化功能评价 | 第67页 |
| 2.2.6 MRJPs及雌二醇对小鼠成骨细胞增殖的影响 | 第67-68页 |
| 2.2.7 Q-PCR检测时钟节律基因 | 第68页 |
| 3 结果与分析 | 第68-80页 |
| 3.1 补充MRJPs及碳酸氢钾对大鼠的评价 | 第68-70页 |
| 3.2 骨密度及血液中骨生化标记物的检测 | 第70-73页 |
| 3.3 尿液钙含量及可滴定酸 | 第73-75页 |
| 3.4 抗氧化功能评价 | 第75-77页 |
| 3.5 MRJPs及雌二醇对小鼠成骨细胞增殖的影响 | 第77页 |
| 3.6 MRJPs及雌二醇对小鼠昼夜节律基因的影响 | 第77-80页 |
| 4 本章小结 | 第80-82页 |
| 第五章 MRJPs对细胞的抗衰老作用研究 | 第82-90页 |
| 1 引言 | 第82页 |
| 2 材料与方法 | 第82-84页 |
| 2.1 实验材料 | 第82-83页 |
| 2.2 实验方法 | 第83-84页 |
| 2.2.1 MRJPs对细胞生长的影响 | 第83页 |
| 2.2.2 MRJPs对细胞生长的拉曼光谱学检测 | 第83页 |
| 2.2.3 MRJPs对细胞衰老的影响 | 第83页 |
| 2.2.4 MRJPs对细胞生长周期的影响 | 第83-84页 |
| 3 结果与分析 | 第84-89页 |
| 3.1 MRJPs最佳浓度的确定及其促增殖作用 | 第84-86页 |
| 3.2 MRJPs对细胞生长周期的影响 | 第86-87页 |
| 3.3 MRJPs干预对MRC-5的光谱学检测 | 第87-88页 |
| 3.4 MRJPs干预延缓MRC-5细胞的衰老 | 第88-89页 |
| 4 小结 | 第89-90页 |
| 第六章 结论与展望 | 第90-94页 |
| 1 主要结论 | 第90-92页 |
| 2 创新点 | 第92页 |
| 3 展望 | 第92-94页 |
| 参考文献 | 第94-111页 |
| 致谢 | 第111-112页 |
| 作者简介 | 第112页 |
| 攻读博士期间主要发表的论文 | 第112页 |
