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牛乳酪蛋白胃肠水解多肽检测及其Caco-2细胞吸收模型建立

摘要第4-6页
ABSTRACT第6-8页
中英文缩写对照第9-13页
1 引言第13-22页
    1.1 牛乳酪蛋白的营养价值第13-14页
    1.2 牛乳酪蛋白水解多肽活性研究进展第14-18页
        1.2.1 抗氧化活性肽的研究现状第15-16页
        1.2.2 抗菌活性肽的研究现状第16-18页
    1.3 人结肠腺癌Caco-2细胞系及其研究进展第18-20页
        1.3.1 Caco-2细胞系研究现状第18-19页
        1.3.2 应用于营养物质的吸收研究进展第19-20页
    1.4 本课题主要研究内容和技术路线第20-22页
2 牛乳酪蛋白体外及体内胃肠消化水解研究第22-45页
    2.1 材料试剂与仪器第22-24页
        2.1.1 试验材料与试剂第22-23页
        2.1.2 主要仪器与设备第23-24页
    2.2 试验方法第24-31页
        2.2.1 牛乳酪蛋白的模拟胃肠水解研究第24-25页
        2.2.2 牛乳酪蛋白小鼠体内水解实验第25页
        2.2.3 酪蛋白水解物的水解度测定第25-26页
        2.2.4 酪蛋白水解液抗氧化及抗菌活性检测第26-28页
        2.2.5 酪蛋白水解液SDS-PAGE电泳检测第28-29页
        2.2.6 酪蛋白水解液Tricine-SDS-PAGE电泳检测第29-30页
        2.2.7 水解液高效CE电泳检测第30-31页
        2.2.8 水解液高效RP-HPLC检测第31页
    2.3 结果与讨论第31-43页
        2.3.1 不同水解时间酪蛋白水解情况分析第31-34页
        2.3.2 酪蛋白水解液抗氧化及抗菌活性分析第34-38页
        2.3.3 SDS-PAGE电泳图结果分析第38-40页
        2.3.4 Tricine-SDS-PAGE电泳图结果分析第40页
        2.3.5 高效CE电泳图谱分析第40-41页
        2.3.6 高效RP-HPLC图谱分析第41-42页
        2.3.7 小鼠胃肠水解的CE及RP-HPLC分析第42-43页
    2.4 本章小结第43-45页
3 小肠Caco-2细胞吸收模型建立及水解液吸收初步研究第45-66页
    3.1 材料试剂与仪器第45-48页
        3.1.1 试验材料与试剂第45-46页
        3.1.2 主要仪器设备第46-47页
        3.1.3 工作液的配置第47-48页
    3.2 试验方法第48-53页
        3.2.1 仪器、器材及无菌室处理第48页
        3.2.2 细胞培养情况及形态观察第48-49页
        3.2.3 细胞存活率的检测方法第49页
        3.2.4 考察不同消化时间对细胞形态及细胞活性的影响第49-50页
        3.2.5 不同浓度的牛乳酪蛋白水解液对细胞存活的影响第50页
        3.2.6 Transwell板培养、通透性检测及过膜实验第50-52页
        3.2.7 高效CE电泳过膜物质分析第52-53页
        3.2.8 高效RP-HPLC过膜物质分析第53页
    3.3 结果与讨论第53-65页
        3.3.1 细胞培养传代时间、消化时间、复苏及单层膜状态的确定第53-58页
        3.3.2 不同浓度多肽水解液对细胞存活的影响第58-60页
        3.3.3 Caco-2单层膜通透性-细胞形态学结果分析第60-61页
        3.3.4 Caco-2单层膜通透性-TEER结果分析第61页
        3.3.5 Caco-2单层膜通透性-荧光黄结果分析第61-62页
        3.3.6 高效CE电泳过膜物质图谱分析第62-63页
        3.3.7 高效RP-HPLC过膜物质图谱分析第63-65页
    3.4 本章小结第65-66页
4 结论与展望第66-69页
    4.1 牛乳酪蛋白体外及体内胃肠消化水解研究第66-67页
    4.2 小肠细胞Caco-2模型建立及水解液吸收初步研究第67页
    4.3 尚存问题第67-68页
    4.4 展望第68-69页
致谢第69-70页
参考文献第70-78页
攻读学位期间所取得的学术成果第78-79页

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