麦麸酯酶的制备及其酶学性质的研究
| 摘要 | 第1-6页 |
| Abstract | 第6-12页 |
| 1 文献综述 | 第12-24页 |
| ·麦麸的组成及开发利用现状 | 第12页 |
| ·酯酶和植物酯酶的概述 | 第12-16页 |
| ·酯酶和植物酯酶性质及作用 | 第12-13页 |
| ·植物酯酶应用于农药残留快速检测的研究进展 | 第13-16页 |
| ·酯酶的分离纯化 | 第16-22页 |
| ·酶的粗提取 | 第16-18页 |
| ·常用的分离沉淀技术 | 第18-20页 |
| ·常用的纯化技术 | 第20-22页 |
| ·酯酶酶学性质 | 第22页 |
| ·立题意义及研究内容 | 第22-24页 |
| ·立题意义 | 第22-23页 |
| ·研究内容 | 第23-24页 |
| 2 材料与方法 | 第24-35页 |
| ·材料、试剂及仪器 | 第24页 |
| ·实验材料与试剂 | 第24页 |
| ·主要仪器与设备 | 第24页 |
| ·溶液配制 | 第24-25页 |
| ·显色液的配制 | 第24-25页 |
| ·a-萘酚标准溶液的配制 | 第25页 |
| ·a-乙酸萘酯标准溶液的配制 | 第25页 |
| ·研究方法 | 第25-34页 |
| ·麦麸酯酶酶活力测定条件的优化研究 | 第25-27页 |
| ·麦麸酯酶提取条件的优化研究 | 第27-29页 |
| ·麦麸酯酶双水相萃取纯化条件的优化研究 | 第29-31页 |
| ·麦麸酯酶纯化条件的研究 | 第31-32页 |
| ·麦麸酯酶基本酶学性质分析 | 第32-34页 |
| ·数据分析 | 第34-35页 |
| 3 结果与分析 | 第35-68页 |
| ·麦麸酯酶酶活力测定条件的优化研究 | 第35-43页 |
| ·最大吸收波长的确定 | 第35页 |
| ·酶活力测定条件优化单因素实验 | 第35-38页 |
| ·响应面法优化麦麸酯酶酶活力测定条件 | 第38-42页 |
| ·麦麸酯酶酶活力测定条件的确定及验证 | 第42-43页 |
| ·麦麸酯酶提取条件的优化研究 | 第43-49页 |
| ·影响麦麸酯酶活性的主要提取因素分析 | 第43-47页 |
| ·响应面法优化麦麸酯酶提取条件 | 第47-49页 |
| ·麦麸酯酶提取条件的确定及验证 | 第49页 |
| ·麦麸酯酶双水相萃取条件的优化研究 | 第49-58页 |
| ·PEG/(NH_4)_2SO_4双水相系统相图 | 第49-50页 |
| ·麦麸酯酶双水相萃取条件优化单因素实验 | 第50-53页 |
| ·响应面法优化麦麸酯酶双水相萃取条件 | 第53-57页 |
| ·麦麸酯酶双水相萃取条件的确定及验证 | 第57-58页 |
| ·麦麸酯酶纯化条件的研究 | 第58-60页 |
| ·硫酸铵分段盐析 | 第58页 |
| ·Sephadex G-200凝胶层析 | 第58-59页 |
| ·麦麸酯酶纯化结果 | 第59页 |
| ·SDS-PAGE酶谱分析及分子量测定 | 第59-60页 |
| ·麦麸酯酶基本酶学性质分析 | 第60-68页 |
| ·紫外吸收光谱 | 第60-61页 |
| ·麦麸酯酶的最适温度 | 第61页 |
| ·麦麸酯酶的热稳定性 | 第61-62页 |
| ·麦麸酯酶的最适pH | 第62-63页 |
| ·麦麸酯酶的pH稳定性 | 第63-64页 |
| ·金属离子对麦麸酯酶的影响 | 第64-65页 |
| ·化学试剂对麦麸酯酶的影响 | 第65-66页 |
| ·麦麸酯酶米氏常数的确定 | 第66页 |
| ·麦麸酯酶半衰期的确定 | 第66-67页 |
| ·小结 | 第67-68页 |
| 4 讨论 | 第68-72页 |
| ·麦麸酯酶酶活力测定显色剂的选择 | 第68页 |
| ·麦麸酯酶酶活力测定显色时间的选择 | 第68-69页 |
| ·麦麸酯酶提取条件的选择 | 第69页 |
| ·麦麸酯酶双水相萃取条件的选择 | 第69页 |
| ·双水相萃取技术的局限和展望 | 第69-70页 |
| ·麦麸酯酶的分离纯化条件的选择 | 第70页 |
| ·蛋白质含量测定方法的选择 | 第70-71页 |
| ·麦麸酯酶酶学性质的讨论 | 第71-72页 |
| 5 结论 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-81页 |
| 致谢 | 第81-82页 |
| 附录：攻读硕士学位论文期间发表的论文 | 第82页 |
