| 摘要 | 第10-11页 |
| Abstract | 第11-12页 |
| 第一章 前言 | 第13-21页 |
| 1.1 黑果腺肋花楸花色苷 | 第13-16页 |
| 1.1.1 黑果腺肋花楸简介 | 第13页 |
| 1.1.2 花色苷提取研究进展 | 第13-14页 |
| 1.1.3 花色苷结构鉴定研究进展 | 第14-15页 |
| 1.1.4 花色苷抗氧化研究进展 | 第15-16页 |
| 1.1.5 黑果腺肋花楸功能性研究进展 | 第16页 |
| 1.2 人视网膜色素上皮细胞相关研究进展 | 第16-19页 |
| 1.2.1 年龄相关性黄斑变性 | 第16-18页 |
| 1.2.2 细胞凋亡的机理 | 第18-19页 |
| 1.3 本课题研究背景和内容 | 第19-21页 |
| 1.3.1 课题研究的背景 | 第19-20页 |
| 1.3.2 课题研究的内容 | 第20-21页 |
| 第二章 响应面试验优化超声提取黑果腺肋花楸花色苷工艺 | 第21-30页 |
| 2.1 材料与方法 | 第21-23页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第21页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第21-22页 |
| 2.1.3 试验方法 | 第22-23页 |
| 2.1.4 数据处理 | 第23页 |
| 2.2 结果与分析 | 第23-29页 |
| 2.2.1 花色苷提取的单因素试验 | 第23-26页 |
| 2.2.2 花色苷提取的响应面试验 | 第26-29页 |
| 2.3 结论 | 第29-30页 |
| 第三章 黑果腺肋花楸花色苷纯化与结构鉴定 | 第30-36页 |
| 3.1 材料与方法 | 第30-32页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第30页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第30页 |
| 3.1.3 试验方法 | 第30-32页 |
| 3.1.4 数据处理 | 第32页 |
| 3.2 结果与分析 | 第32-35页 |
| 3.2.1 黑果腺肋花楸中总花色苷含量及总酚含量 | 第32页 |
| 3.2.2 黑果腺肋花楸中花色苷提取物HPLC-MS/MS分析 | 第32-35页 |
| 3.3 结论 | 第35-36页 |
| 第四章 黑果腺肋花楸花色苷抗氧化性分析 | 第36-40页 |
| 4.1 材料与方法 | 第36-37页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第36页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第36页 |
| 4.1.3 试验方法 | 第36-37页 |
| 4.1.4 数据处理 | 第37页 |
| 4.2 结果与分析 | 第37-39页 |
| 4.2.1 总抗氧化能力(T-AOC) | 第37-38页 |
| 4.2.2 ABTS~+·清除能力 | 第38-39页 |
| 4.2.3 O~(2-)·清除能力 | 第39页 |
| 4.3 结论 | 第39-40页 |
| 第五章 黑果腺肋花楸花色苷提取物对人视网膜色素上皮细胞的保护作用 | 第40-50页 |
| 5.1 材料与方法 | 第40-44页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第40页 |
| 5.1.2 仪器与设备 | 第40-41页 |
| 5.1.3 试验方法 | 第41-44页 |
| 5.1.4 数据处理 | 第44页 |
| 5.2 结果与分析 | 第44-49页 |
| 5.2.1 黑果腺肋花楸花色苷提取物对氧化损伤细胞存活率的影 | 第44-45页 |
| 5.2.2 黑果腺肋花楸花色苷提取物对氧化损伤细胞内ROS的影响 | 第45-46页 |
| 5.2.3 黑果腺肋花楸花色苷提取物对对氧化损伤细胞内caspase-3活性的影响 | 第46页 |
| 5.2.4 黑果腺肋花楸花色苷提取物对氧化损伤细胞凋亡比例的影响 | 第46-48页 |
| 5.2.5 形态学观察 | 第48-49页 |
| 5.3 结论 | 第49-50页 |
| 第六章 结论 | 第50-52页 |
| 6.1 结论 | 第50页 |
| 6.2 展望 | 第50-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 致谢 | 第59-60页 |
| 攻读硕士学位论文期间发表的文章 | 第60-61页 |
