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海参体壁中丝氨酸蛋白酶的性质及其与自溶关系的研究

摘要第4-5页
ABSTRACT第5页
第一章 文献综述第9-17页
    1.1 海参第9页
    1.2 丝氨酸蛋白酶的概述第9-12页
        1.2.1 丝氨酸蛋白酶的简介第9页
        1.2.2 丝氨酸蛋白酶的分类及作用第9-10页
        1.2.3 丝氨酸蛋白酶的应用第10-11页
        1.2.4 水产动物丝氨酸蛋白酶研究进展第11-12页
    1.3 水产动物的自溶第12-15页
        1.3.1 海参自溶酶的研究第12-14页
        1.3.2 其他水产动物及制品的自溶研究第14-15页
    1.4 本课题的研究背景及主要研究内容第15-17页
第二章 材料与方法第17-26页
    2.1 实验材料第17-20页
        2.1.1 材料第17页
        2.1.2 主要实验药品第17-19页
        2.1.3 主要仪器和设备第19-20页
    2.2 实验方法第20-26页
        2.2.1 丝氨酸蛋白酶粗酶的提取第20页
        2.2.2 丝氨酸蛋白酶活力测定第20-22页
            2.2.2.1 荧光底物法第20-21页
            2.2.2.2 可见光底物法第21-22页
        2.2.3 蛋白质含量的测定第22-23页
        2.2.4 电泳方法第23页
        2.2.5 丝氨酸蛋白酶的酶学性质测定第23-24页
            2.2.5.1 底物特异性的测定第23页
            2.2.5.2 最适pH值的测定第23页
            2.2.5.3 最适温度及温度稳定性的测定第23-24页
            2.2.5.4 金属离子对丝氨酸蛋白酶的影响第24页
            2.2.5.5 抑制剂激活剂对丝氨酸蛋白酶的影响第24页
        2.2.6 海参丝氨酸蛋白酶与自溶关系的研究第24-26页
            2.2.6.1 海参自溶第24-25页
            2.2.6.2 SDS-PAGE检测自溶后蛋白变化第25页
            2.2.6.3 Lowy法测可溶性蛋白含量变化第25页
            2.2.6.4 TCA-Lowy法测可溶性寡肽含量变化第25页
            2.2.6.5 特异性底物法测丝氨酸蛋白酶活性变化第25-26页
第三章 结果与讨论第26-50页
    3.1 提取条件对丝氨酸蛋白酶活力的影响第26-27页
        3.1.1 浸提缓冲液的选择第26页
        3.1.2 硫酸铵饱和度的选择第26-27页
    3.2 丝氨酸蛋白酶的酶学性质第27-32页
        3.2.1 底物特异性第27-28页
        3.2.2 最适pH值第28-29页
        3.2.3 最适温度第29页
        3.2.4 温度稳定性第29-30页
        3.2.5 金属离子对丝氨酸蛋白酶活性的影响第30-31页
        3.2.6 抑制剂对丝氨酸蛋白酶活性的影响第31-32页
    3.3 海参体壁中弹性蛋白酶及胰蛋白酶的酶学性质第32-39页
        3.3.1 最适pH第32-34页
        3.3.2 最适温度第34-35页
        3.3.3 温度稳定性第35-36页
        3.3.4 金属离子对弹性蛋白酶及胰蛋白酶的影响第36-37页
        3.3.5 抑制剂对弹性蛋白酶的影响第37-39页
    3.4 丝氨酸蛋白酶与自溶的关系第39-50页
        3.4.1 自溶实验第39页
        3.4.2 自溶过程中蛋白质的降解情况第39-43页
        3.4.3 自溶过程中可溶性蛋白的变化第43-45页
        3.4.4 自溶过程中可溶性寡肽的变化第45-47页
        3.4.5 自溶过程中丝氨酸蛋白酶活性的变化第47-50页
第四章 结论与展望第50-51页
    4.1 结论第50页
    4.2 展望第50-51页
参考文献第51-55页
致谢第55页

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