摘要 | 第7-9页 |
Abstract | 第9-12页 |
缩略词 | 第13-14页 |
第一章 前言 | 第14-25页 |
1.1 芽孢杆菌调控肠道菌群的研究 | 第14-15页 |
1.1.1 纳豆芽孢杆菌对肠道菌群的调节 | 第14页 |
1.1.2 地衣芽孢杆菌对肠道菌群的调节 | 第14页 |
1.1.3 枯草芽孢杆菌对肠道菌群的调节 | 第14-15页 |
1.2 肠道菌群的研究方法 | 第15-18页 |
1.2.1 肠道菌群取样 | 第15页 |
1.2.2 肠道菌群检测 | 第15-18页 |
1.2.2.1 传统检测方法 | 第15页 |
1.2.2.2 现代检测方法 | 第15-18页 |
1.3 芽孢杆菌调节肠道菌群的机理 | 第18-19页 |
1.3.1 生物耗氧 | 第18-19页 |
1.3.2 占位作用 | 第19页 |
1.3.3 代谢产生多种消化酶和代谢产物 | 第19页 |
1.4 芽孢杆菌的免疫调节研究 | 第19-21页 |
1.4.1 纳豆芽孢杆菌的免疫调节作用 | 第20页 |
1.4.2 地衣芽孢杆菌的免疫调节作用 | 第20页 |
1.4.3 枯草芽孢杆菌的免疫调节作用 | 第20-21页 |
1.4.4 其它芽孢杆菌的免疫调节作用 | 第21页 |
1.5 纳豆芽孢杆菌发酵产品功能的研究 | 第21-23页 |
1.5.1 纳豆的成分 | 第21页 |
1.5.2 纳豆的功能 | 第21-22页 |
1.5.3 纳豆冻干粉的免疫调节作用 | 第22页 |
1.5.4 纳豆菌制剂的免疫调节作用 | 第22-23页 |
1.6 本课题的立题背景、研究意义、主要研究内容及创新之处 | 第23-25页 |
1.6.1 立题背景和研究意义 | 第23页 |
1.6.2 主要研究内容 | 第23-24页 |
1.6.3 本论文的特点和创新之处 | 第24-25页 |
第二章 纳豆菌制剂和纳豆冻干粉的成分分析比较 | 第25-32页 |
2.1 材料和方法 | 第25-26页 |
2.1.1 材料与仪器 | 第25-26页 |
2.2 实验方法 | 第26-27页 |
2.2.1 纳豆菌制剂制备 | 第26页 |
2.2.2 纳豆冻干粉的制备 | 第26页 |
2.2.3 活菌数测定 | 第26页 |
2.2.4 成分的测定 | 第26-27页 |
2.2.5 纳豆菌制剂和纳豆冻干粉保藏试验 | 第27页 |
2.3 结果与分析 | 第27-31页 |
2.3.1 纳豆菌生长图及纳豆发酵结果 | 第27页 |
2.3.2 纳豆产品活菌数 | 第27-28页 |
2.3.3 营养成分分析结果 | 第28-29页 |
2.3.4 功能成分分析结果 | 第29-30页 |
2.3.5 纳豆菌制剂和纳豆冻干粉保藏试验 | 第30-31页 |
2.4 结论 | 第31-32页 |
第三章 纳豆菌制剂对小鼠免疫调节作用研究 | 第32-40页 |
3.1 材料与方法 | 第32-33页 |
3.1.1 试验材料 | 第32页 |
3.1.2 实验设备 | 第32-33页 |
3.2 试验方法 | 第33-34页 |
3.2.1 动物分组及其给药方法 | 第33页 |
3.2.2 免疫力增强动物试验 | 第33-34页 |
3.2.2.1 免疫器官指数测定 | 第33页 |
3.2.2.2 ConA诱导的小鼠脾淋巴细胞转化试验 | 第33页 |
3.2.2.3 小鼠溶血素的测定 | 第33-34页 |
3.2.2.4 小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞试验(半体内法) | 第34页 |
3.2.3 血清中IL-2、IL-10、TNF-α、IFN-γ、NO、iNOS的检测 | 第34页 |
3.2.4 小鼠生长性能及其白蛋白ALB、球蛋白GLB、白球比(A/G)的检测 | 第34页 |
3.2.5 数据处理 | 第34页 |
3.3 结果与分析 | 第34-39页 |
3.3.1 BNPr对小鼠免疫调节作用影响 | 第34-37页 |
3.3.1.1 BNPr对小鼠免疫器官指数的影响 | 第34-35页 |
3.3.1.2 BNPr对小鼠脾淋巴细胞转化的影响 | 第35-36页 |
3.3.1.3 BNPr对小鼠血清溶血素的影响 | 第36页 |
3.3.1.4 BNPr对小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞影响 | 第36-37页 |
3.3.2 BNPr对小鼠细胞因子分泌功能的影响 | 第37-38页 |
3.3.3 BNPr对小鼠生长性能的影响 | 第38-39页 |
3.4 结论 | 第39-40页 |
第四章 纳豆冻干粉对小鼠免疫调节作用研究 | 第40-50页 |
4.1 材料与方法 | 第40-41页 |
4.1.1 材料与试剂 | 第40-41页 |
4.1.2 仪器与设备 | 第41页 |
4.2 方法 | 第41-43页 |
4.2.1 动物分组及其给药方法 | 第41页 |
4.2.2 免疫力增强动物试验 | 第41-42页 |
4.2.3 血清中IL-2、IL-10、TNF-α、IFN-γ、iNOS、NO的检测 | 第42页 |
4.2.4 小鼠生长性能及其白蛋白ALB、球蛋白GLB、白球比(A/G)的检测 | 第42页 |
4.2.5 半数溶血值、吞噬百分率和吞噬指数计算 | 第42-43页 |
4.2.6 数据处理 | 第43页 |
4.3 结果与分析 | 第43-48页 |
4.3.1 NLP对小鼠免疫调节作用影响 | 第43-45页 |
4.3.1.1 NLP对小鼠免疫器官指数的影响 | 第43页 |
4.3.1.2 NLP对小鼠脾淋巴细胞转化的影响 | 第43-44页 |
4.3.1.3 NLP对小鼠血清溶血素的影响 | 第44页 |
4.3.1.4 NLP对小鼠腹腔巨噬细胞吞噬鸡红细胞影响 | 第44-45页 |
4.3.2 NLP对小鼠细胞因子分泌功能的影响 | 第45-47页 |
4.3.3 NLP对小鼠生长性能的影响 | 第47-48页 |
4.4 结论 | 第48页 |
4.5 第三、第四章小结 | 第48-50页 |
第五章 纳豆菌制剂对小鼠肠道菌群调控作用研究 | 第50-65页 |
5.1 材料与方法 | 第50页 |
5.1.1 样品采集 | 第50页 |
5.1.2 DNA提取 | 第50页 |
5.1.3 PCR扩增及纯化 | 第50页 |
5.1.4 建库以及Miseq测序 | 第50页 |
5.1.5 数据分析 | 第50页 |
5.1.6 生物信息分析 | 第50页 |
5.2 结果与讨论 | 第50-64页 |
5.2.1 PCR结果分析 | 第50-51页 |
5.2.2 序列信息和多样性指数 | 第51页 |
5.2.3 稀释曲线 | 第51-52页 |
5.2.4 门水平上的分类情况 | 第52-54页 |
5.2.5 属水平上的分类情况 | 第54-55页 |
5.2.6 聚类分析 | 第55-61页 |
5.2.6.1 基于OTU的聚类分析(97% similarity) | 第55-57页 |
5.2.6.2 基于门水平的聚类分析 | 第57-59页 |
5.2.6.3 基于属水平的聚类分析 | 第59-61页 |
5.2.7 Unifrac.Weighted分析 | 第61-62页 |
5.2.8 纳豆菌及其益生菌、致病菌的变化情况 | 第62-63页 |
5.2.9 剂量分析 | 第63-64页 |
5.3 结论 | 第64-65页 |
第六章 纳豆冻干粉对小鼠肠道菌群调控作用研究 | 第65-81页 |
6.1 材料与方法 | 第65页 |
6.1.1 样品采集 | 第65页 |
6.1.2 DNA提取 | 第65页 |
6.1.3 PCR扩增及纯化 | 第65页 |
6.1.4 建库以及Miseq测序 | 第65页 |
6.1.5 数据分析 | 第65页 |
6.1.6 生物信息分析 | 第65页 |
6.2 结果与讨论 | 第65-79页 |
6.2.1 PCR结果分析 | 第65页 |
6.2.2 序列信息和多样性指数 | 第65-66页 |
6.2.3 稀释曲线 | 第66-67页 |
6.2.4 门水平上的分类情况 | 第67-68页 |
6.2.5 属水平上的分类情况 | 第68-70页 |
6.2.6 聚类分析 | 第70-76页 |
6.2.6.1 基于OTU的聚类分析(97% similarity) | 第70-72页 |
6.2.6.2 基于门水平的聚类分析 | 第72-74页 |
6.2.6.3 基于属水平的聚类分析 | 第74-76页 |
6.2.7 Unifrac.Weighted分析 | 第76-77页 |
6.2.8 特定菌及其益生菌、致病菌的变化情况 | 第77-79页 |
6.2.9 剂量分析 | 第79页 |
6.3 结论 | 第79页 |
6.4 第五、第六章小结 | 第79-81页 |
第七章 结论与展望 | 第81-84页 |
7.1 结论 | 第81-83页 |
7.1.1 纳豆菌制剂和纳豆冻干粉的成分比较分析 | 第81页 |
7.1.2 纳豆菌制剂对小鼠的免疫调节作用 | 第81页 |
7.1.3 纳豆冻干粉对小鼠的免疫调节作用 | 第81-82页 |
7.1.4 纳豆菌制剂对小鼠肠道菌群的调控作用 | 第82页 |
7.1.5 纳豆冻干粉对小鼠肠道菌群的调控作用 | 第82-83页 |
7.2 展望 | 第83-84页 |
参考文献 | 第84-92页 |
攻读硕士期间的研究成果 | 第92-93页 |
致谢 | 第93页 |