| 摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-14页 |
| 缩略词 | 第15-22页 |
| 第一章 绪论 | 第22-42页 |
| 1.1 果胶提取及其功能特性研究进展 | 第22-30页 |
| 1.1.1 果胶的化学结构研究进展 | 第22-24页 |
| 1.1.1.1 同型半乳糖醛酸聚糖(HG) | 第23页 |
| 1.1.1.2 鼠李糖半乳糖醛酸聚糖I(RG-I) | 第23-24页 |
| 1.1.1.3 含取代基的半乳糖醛酸聚糖(GS) | 第24页 |
| 1.1.2 果胶性质的分析方法 | 第24-25页 |
| 1.1.3 果胶提取研究进展 | 第25-29页 |
| 1.1.3.1 传统方法 | 第25页 |
| 1.1.3.2 酶辅助提取法 | 第25-27页 |
| 1.1.3.3 微波辅助提取法 | 第27-29页 |
| 1.1.4 果胶功能特性研究进展 | 第29-30页 |
| 1.2 超声辅助提取的研究进展 | 第30-35页 |
| 1.2.1 超声的作用机制 | 第30-32页 |
| 1.2.2 超声辅助提取多酚类物质的研究进展 | 第32-33页 |
| 1.2.3 超声辅助提取类胡萝卜素的研究进展 | 第33-34页 |
| 1.2.4 超声辅助提取油类物质的研究进展 | 第34-35页 |
| 1.3 超声辅助提取植物多糖的研究进展 | 第35-39页 |
| 1.3.1 超声辅助提取细胞内容物的机理 | 第35-36页 |
| 1.3.2 超声辅助提取果胶 | 第36-38页 |
| 1.3.2.1 超声辅助提取对果胶的影响 | 第36-37页 |
| 1.3.2.2 超声辅助提取伴随着果胶降解 | 第37-38页 |
| 1.3.3 超声辅助提取其他植物多糖 | 第38-39页 |
| 1.4 立题背景、研究意义和研究内容 | 第39-42页 |
| 1.4.1 立题背景和研究意义 | 第39-41页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第41-42页 |
| 第二章 超声辅助柑橘皮果胶提取的释放规律及动力学研究 | 第42-66页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第42-43页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第42-43页 |
| 2.1.2 仪器与设备 | 第43页 |
| 2.2 实验方法 | 第43-50页 |
| 2.2.1 原料预处理 | 第43页 |
| 2.2.2 超声波提取装置 | 第43-45页 |
| 2.2.3 超声辅助提取果胶 | 第45-46页 |
| 2.2.4 传统热酸法提取果胶 | 第46-47页 |
| 2.2.5 超声辅助提取果胶响应曲面实验设计 | 第47-48页 |
| 2.2.6 果胶提取的动力学研究 | 第48-50页 |
| 2.2.6.1 数学模型的理论推导 | 第48-49页 |
| 2.2.6.2 数据采集及模型参数的确定 | 第49页 |
| 2.2.6.3 果胶溶出与降解反应的活化能 | 第49-50页 |
| 2.2.7 数据处理与分析 | 第50页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第50-64页 |
| 2.3.1 超声各参量对果胶释放率的影响 | 第50-55页 |
| 2.3.1.1 超声功率密度对果胶释放率的影响 | 第50-51页 |
| 2.3.1.2 超声强度对果胶释放率的影响 | 第51-52页 |
| 2.3.1.3 占空比对果胶释放率的影响 | 第52页 |
| 2.3.1.4 提取温度对果胶释放率的影响 | 第52-53页 |
| 2.3.1.5 料液比对果胶释放率的影响 | 第53-54页 |
| 2.3.1.6 提取时间对果胶释放率的影响 | 第54-55页 |
| 2.3.2 超声辅助提取果胶响应曲面分析 | 第55-59页 |
| 2.3.2.1 响应曲面模型拟合及统计分析 | 第55-57页 |
| 2.3.2.2 响应曲面图和等高线图分析 | 第57-58页 |
| 2.3.2.3 提取参数优化及模型验证 | 第58-59页 |
| 2.3.3 最优条件下超声辅助提取法与传统提取法的比较 | 第59页 |
| 2.3.4 超声辅助提取柑橘皮果胶动力学的研究 | 第59-64页 |
| 2.3.4.1 不同提取方法下果胶提取动力学模型的建立 | 第59-62页 |
| 2.3.4.2 不同提取阶段对果胶释放动态变化影响研究 | 第62页 |
| 2.3.4.3 果胶提取动力学热效应的研究 | 第62-63页 |
| 2.3.4.4 果胶提取动力学超声波与热协同效应的研究 | 第63-64页 |
| 2.3.4.5 基于动力学的表观活化能的比较研究 | 第64页 |
| 2.4 本章小结 | 第64-66页 |
| 第三章 超声辅助提取对柑橘皮果胶结构与功能特性的影响研究 | 第66-93页 |
| 3.1 材料与仪器 | 第66-68页 |
| 3.1.1 材料与试剂 | 第66-67页 |
| 3.1.2 仪器与设备 | 第67-68页 |
| 3.2 实验方法 | 第68-75页 |
| 3.2.1 原料预处理 | 第68页 |
| 3.2.2 超声波提取装置 | 第68页 |
| 3.2.3 超声辅助提取果胶 | 第68页 |
| 3.2.4 传统方法提取果胶 | 第68页 |
| 3.2.5 果胶的透析纯化 | 第68-69页 |
| 3.2.6 总糖的测定 | 第69页 |
| 3.2.7 总酚与总黄酮含量的测定 | 第69页 |
| 3.2.8 色泽分析 | 第69页 |
| 3.2.9 扫描电镜(SEM)图像分析 | 第69-70页 |
| 3.2.10 果胶中蛋白含量的测定 | 第70页 |
| 3.2.11 果胶分子量及其分布的测定 | 第70页 |
| 3.2.12 半乳糖醛酸含量的测定 | 第70-71页 |
| 3.2.13 酯化度的测定 | 第71页 |
| 3.2.14 单糖组成的测定 | 第71-72页 |
| 3.2.15 傅里叶变换红外光谱分析(FT-IR) | 第72页 |
| 3.2.16 核磁共振波谱分析(NMR) | 第72-73页 |
| 3.2.17 X射线衍射研究(XRD) | 第73页 |
| 3.2.18 原子力显微镜图像分析(AFM) | 第73页 |
| 3.2.19 热学特性测定 | 第73页 |
| 3.2.20 流变学特性测定 | 第73-74页 |
| 3.2.21 DPPH自由基清除实验 | 第74页 |
| 3.2.22 ORAC氧化自由基吸收能力实验 | 第74页 |
| 3.2.23 胰脂肪酶活性的测定 | 第74-75页 |
| 3.2.24 数据处理与分析 | 第75页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第75-91页 |
| 3.3.1 超声辅助提取对果胶基本成分的影响 | 第75页 |
| 3.3.2 超声辅助提取对果胶理化性质的影响 | 第75-80页 |
| 3.3.2.1 色泽分析 | 第75-77页 |
| 3.3.2.2 扫描电镜图像分析 | 第77页 |
| 3.3.2.3 果胶分子量及其分布与酯化度 | 第77-78页 |
| 3.3.2.4 单糖组成 | 第78-80页 |
| 3.3.3 超声辅助提取对果胶结构特性的影响 | 第80-84页 |
| 3.3.3.1 红外光谱分析 | 第80-81页 |
| 3.3.3.2 X射线衍射图谱分析 | 第81-82页 |
| 3.3.3.3 核磁共振图谱分析 | 第82-83页 |
| 3.3.3.4 原子力显微镜图像分析 | 第83-84页 |
| 3.3.4 超声辅助提取对果胶功能特性的影响 | 第84-89页 |
| 3.3.4.1 超声辅助提取对果胶热学性质的影响 | 第84-85页 |
| 3.3.4.2 超声辅助提取对果胶流变特性的影响 | 第85-89页 |
| 3.3.5 超声辅助提取对果胶生物活性的影响 | 第89-91页 |
| 3.3.5.1 超声辅助提取对果胶体外抗氧化活性的影响 | 第89-90页 |
| 3.3.5.2 超声辅助提取对果胶抑制胰脂肪酶活性的影响 | 第90-91页 |
| 3.4 本章小结 | 第91-93页 |
| 第四章 超声对柑橘皮细胞壁多糖解聚规律和途径的研究 | 第93-106页 |
| 4.1 材料与仪器 | 第93-94页 |
| 4.1.1 材料与试剂 | 第93页 |
| 4.1.2 仪器与设备 | 第93-94页 |
| 4.2 实验方法 | 第94-96页 |
| 4.2.1 原料预处理 | 第94页 |
| 4.2.2 超声波提取装置 | 第94页 |
| 4.2.3 细胞壁多糖各组分的提取 | 第94-96页 |
| 4.2.3.1 醇不溶性物质(AIS)的制备 | 第94-95页 |
| 4.2.3.2 超声辐射处理AIS | 第95页 |
| 4.2.3.3 水溶性果胶(WSP)的制备 | 第95页 |
| 4.2.3.4 螯合性果胶(CSP)的制备 | 第95页 |
| 4.2.3.5 碱溶性果胶(ASP)和半纤维素组分的制备 | 第95-96页 |
| 4.2.4 组分含量的测定 | 第96页 |
| 4.2.5 总糖的测定 | 第96页 |
| 4.2.6 分子量及其分布的测定 | 第96页 |
| 4.2.7 单糖组成的测定 | 第96页 |
| 4.2.8 傅里叶变换红外光谱分析 | 第96页 |
| 4.2.9 数据处理与分析 | 第96页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第96-104页 |
| 4.3.1 超声对橘皮细胞壁多糖组分含量的影响 | 第96-98页 |
| 4.3.2 超声对橘皮细胞壁多糖组分分子量及其分布的影响 | 第98-99页 |
| 4.3.3 超声对橘皮细胞壁多糖组分单糖组成的影响 | 第99-103页 |
| 4.3.4 超声对橘皮细胞壁多糖组分红外光谱的影响 | 第103-104页 |
| 4.4 本章小结 | 第104-106页 |
| 第五章 超声辅助提取柑橘皮果胶的机理研究 | 第106-129页 |
| 5.1 材料与仪器 | 第106-107页 |
| 5.1.1 材料与试剂 | 第106-107页 |
| 5.1.2 仪器与设备 | 第107页 |
| 5.2 实验方法 | 第107-110页 |
| 5.2.1 原料预处理 | 第107页 |
| 5.2.2 超声波提取装置 | 第107页 |
| 5.2.3 超声辅助提取果胶 | 第107-108页 |
| 5.2.3.1 添加自由基清除剂 | 第107页 |
| 5.2.3.2 选用不同粒径大小物料 | 第107页 |
| 5.2.3.3 超声辅助提取果胶的两个阶段 | 第107-108页 |
| 5.2.4 传统方法提取果胶 | 第108页 |
| 5.2.5 果胶的透析纯化 | 第108页 |
| 5.2.6 分子量及其分布的测定 | 第108页 |
| 5.2.7 半乳糖醛酸含量的测定 | 第108页 |
| 5.2.8 酯化度的测定 | 第108页 |
| 5.2.9 单糖组成的测定 | 第108页 |
| 5.2.10 傅里叶变换红外光谱分析 | 第108页 |
| 5.2.11 溶胀系数(Swelling Index,SI)的测定 | 第108-109页 |
| 5.2.12 扫描电镜(SEM)图像分析 | 第109页 |
| 5.2.13 透射电镜(TEM)图像分析 | 第109-110页 |
| 5.2.14 数据处理与分析 | 第110页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第110-127页 |
| 5.3.1 自由基清除剂对超声辅助提取果胶释放率的影响 | 第110-111页 |
| 5.3.2 不同粒径物料对超声辅助提取果胶的影响 | 第111-117页 |
| 5.3.2.1 不同粒径物料对超声辅助提取果胶释放率的影响 | 第111-112页 |
| 5.3.2.2 超声对不同粒径物料溶胀效应的影响 | 第112-113页 |
| 5.3.2.3 不同粒径物料对超声辅助提取果胶分子量及酯化度的影响 | 第113-114页 |
| 5.3.2.4 不同粒径物料对超声辅助提取果胶单糖组成及红外光谱的影响 | 第114-117页 |
| 5.3.3 超声波各参量对溶胀系数的影响 | 第117-119页 |
| 5.3.4 超声波对橘皮结构的影响 | 第119-124页 |
| 5.3.4.1 超声波对橘皮表观结构的影响 | 第119-121页 |
| 5.3.4.2 超声波对橘皮残渣细胞内部结构的影响 | 第121-124页 |
| 5.3.5 超声辅助两阶段提取及溶胀效应 | 第124-126页 |
| 5.3.6 超声辅助提取果胶的机理模型 | 第126-127页 |
| 5.4 本章小结 | 第127-129页 |
| 第六章 结论与展望 | 第129-133页 |
| 6.1 结论 | 第129-131页 |
| 6.2 创新点 | 第131-132页 |
| 6.3 展望 | 第132-133页 |
| 参考文献 | 第133-148页 |
| 作者简介 | 第148页 |
| 在学期间取得的科研成果 | 第148-150页 |
| 致谢 | 第150页 |
