| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-9页 |
| 第1章 前言 | 第9-21页 |
| ·甜味感知的生物学基础 | 第9-14页 |
| ·甜味信号关键分子 | 第9-11页 |
| ·甜味信号转导途径 | 第11-13页 |
| ·肠道与味觉 | 第13-14页 |
| ·雌激素与甜味感知 | 第14-19页 |
| ·雌激素受体 | 第14-15页 |
| ·雌激素受体信号转导途径 | 第15-17页 |
| ·雌激素与甜味感知 | 第17-19页 |
| ·本课题技术路线、研究目标及意义 | 第19-21页 |
| ·技术路线 | 第19页 |
| ·研究目标及内容 | 第19-20页 |
| ·研究意义 | 第20-21页 |
| 第2章 雌激素影响STC-1细胞甜味信号转导的功能性研究 | 第21-37页 |
| ·引言 | 第21页 |
| ·材料与仪器设备 | 第21-23页 |
| ·菌种与试剂 | 第21-22页 |
| ·仪器与设备 | 第22-23页 |
| ·实验技术路线及方法 | 第23-27页 |
| ·实验技术路线 | 第23页 |
| ·STC-1细胞的培养 | 第23-24页 |
| ·胞外ATP检测 | 第24-25页 |
| ·胞内Ca~(2+)检测 | 第25-26页 |
| ·数据处理与统计 | 第26-27页 |
| ·结果与分析 | 第27-35页 |
| ·胞外ATP检测处理条件的确定 | 第27-30页 |
| ·不同浓度甜味剂诱导胞外ATP和胞内Ca~(2+)的释放 | 第30-32页 |
| ·雌激素干预对胞外ATP释放的影响 | 第32-34页 |
| ·雌激素对胞内Ca~(2+)释放的影响 | 第34-35页 |
| ·本章小结 | 第35-37页 |
| 第3章 雌激素影响STC-1细胞甜味信号转导的分子机理研究 | 第37-53页 |
| ·引言 | 第37页 |
| ·材料与仪器设备 | 第37-39页 |
| ·菌种与试剂 | 第37-38页 |
| ·仪器与设备 | 第38-39页 |
| ·实验技术路线及方法 | 第39-45页 |
| ·实验技术路线 | 第39页 |
| ·实验分组 | 第39-40页 |
| ·实时荧光定量PCR(Quantitative Real-Time PCR) | 第40-42页 |
| ·蛋白免疫印迹(Western blot) | 第42-44页 |
| ·数据处理与统计 | 第44-45页 |
| ·结果与分析 | 第45-52页 |
| ·雌激素受体在STC-1细胞上的表达验证 | 第45-46页 |
| ·雌激素干预对甜味信号分子mRNA表达的影响 | 第46-50页 |
| ·雌激素干预对甜味信号蛋白表达的影响 | 第50-52页 |
| ·本章小结 | 第52-53页 |
| 第4章 结论、创新点与展望 | 第53-55页 |
| ·结论 | 第53-54页 |
| ·创新点 | 第54页 |
| ·展望 | 第54-55页 |
| 参考文献 | 第55-63页 |
| 附录一 缩略词表 | 第63-64页 |
| 附录二 主要试剂配制 | 第64-66页 |
| 附录三 qRT-PCR引物序列 | 第66-67页 |
| 附录四 实时荧光定量PCR扩增和溶解曲线图 | 第67-70页 |
| 附录五 Western blot所用抗体 | 第70-71页 |
| 硕士期间发表论文 | 第71-72页 |
| 致谢 | 第72-73页 |
