摘要 | 第1-4页 |
Abstract | 第4-8页 |
第一章 绪论 | 第8-17页 |
·大米蛋白的酶法改性 | 第9-10页 |
·大米蛋白与淀粉的酶法分离 | 第10页 |
·小分子肽和小分子糖的分离 | 第10-11页 |
·大米多肽的功能特性的研究 | 第11-14页 |
·降胆固醇肽的活性研究 | 第12页 |
·抗氧化肽的活性研究 | 第12-14页 |
·多肽的分离纯化、结构鉴定的研究现状 | 第14-15页 |
·立题背景和意义 | 第15-16页 |
·论文主要内容 | 第16-17页 |
第二章 大米多肽的脱糖工艺的研究 | 第17-31页 |
·前言 | 第17页 |
·材料与仪器 | 第17-18页 |
·材料 | 第17-18页 |
·主要仪器 | 第18页 |
·实验方法 | 第18-21页 |
·常规成分分析 | 第18页 |
·蛋白酶酶活的测定 | 第18页 |
·相同酶活力条件下,大米淀粉和蛋白质的酶法分离 | 第18-19页 |
·气相色谱法测定单糖组分 | 第19页 |
·相对分子量分布的测定 | 第19-20页 |
·大米蛋白水解液的制备 | 第20页 |
·大米酶水解过程中糖产生阶段的确定 | 第20页 |
·硼酸络合法分离大米多肽和可溶性糖工艺参数的优化 | 第20-21页 |
·树脂洗脱工艺的选择 | 第21页 |
·结果与讨论 | 第21-30页 |
·相同酶活下,不同蛋白酶分离大米淀粉和蛋白质效果比较 | 第21-22页 |
·大米在水解的三个阶段中糖和蛋白质的含量 | 第22-23页 |
·大米水解液中糖与蛋白质(肽)分离工艺的确定及优化 | 第23-28页 |
·树脂洗脱工艺的优化 | 第28-30页 |
·本章小结 | 第30-31页 |
第三章 大米多肽的降胆固醇及抗氧化活性的研究 | 第31-42页 |
·前言 | 第31页 |
·材料与仪器 | 第31-32页 |
·材料 | 第31-32页 |
·主要仪器 | 第32页 |
·实验方法 | 第32-34页 |
·模拟胆汁胶束的制备方法 | 第32页 |
·胆固醇含量的测定方法 | 第32页 |
·胆固醇抑制率计算方法的确定 | 第32-33页 |
·清除DPPH·活性的测定 | 第33页 |
·清除超氧阴离子(02-)活性的测定 | 第33页 |
·清除羟基自由基(OH·)活性的测定 | 第33-34页 |
·结果与讨论 | 第34-41页 |
·大米多肽体外降胆固醇活性的研究 | 第34-37页 |
·大米多肽抗氧化活性的研究 | 第37-41页 |
·本章小结 | 第41-42页 |
第四章 抗氧化粳米肽的分离纯化及鉴定 | 第42-59页 |
·前言 | 第42页 |
·材料与仪器 | 第42-43页 |
·材料 | 第42页 |
·主要仪器 | 第42-43页 |
·实验方法 | 第43-44页 |
·样品制备 | 第43页 |
·肽的相对分子量分布的测定 | 第43页 |
·半制备RP-HPLC 分离抗氧化肽 | 第43页 |
·RP-HPLC 分析抗氧化肽 | 第43页 |
·蛋白含量的测定 | 第43页 |
·清除DPPH·活性的测定 | 第43页 |
·清除超氧阴离子活性的测定 | 第43-44页 |
·清除OH·活性的测定 | 第44页 |
·LC-MS 测定肽的结构 | 第44页 |
·结果与讨论 | 第44-58页 |
·脱糖后粳米肽及其超滤后的相对分子量分布 | 第44-45页 |
·半制备RP-HPLC 分离Protease N 水解所得粳米肽 | 第45-50页 |
·LC-MS 分析组分结构 | 第50-58页 |
·本章小结 | 第58-59页 |
主要结论 | 第59-60页 |
问题与展望 | 第60-61页 |
致谢 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-68页 |
附录: 作者在攻读硕士学位期间发表的论文 | 第68页 |