| 摘要 | 第12-15页 |
| ABSTRACT | 第15-18页 |
| 缩略语说明 | 第19-21页 |
| 第一章 绪论 | 第21-43页 |
| 1.1 功能性低聚糖概述 | 第21-22页 |
| 1.2 GOS的生理活性 | 第22-26页 |
| 1.2.1 调节肠道微生物结构 | 第22-23页 |
| 1.2.2 缓解便秘 | 第23页 |
| 1.2.3 促进矿物质吸收 | 第23-24页 |
| 1.2.4 预防癌症 | 第24页 |
| 1.2.5 免疫调节作用 | 第24-25页 |
| 1.2.6 预防炎症性肠病 | 第25-26页 |
| 1.2.7 调节代谢综合征 | 第26页 |
| 1.3 α-GOS的组成与种类 | 第26-29页 |
| 1.3.1 植物来源的α-GOS | 第26-28页 |
| 1.3.2 动物来源的α-GOS | 第28-29页 |
| 1.4 α-GOS的制备方法 | 第29-30页 |
| 1.4.1 从天然产物中提取 | 第29页 |
| 1.4.2 酶法合成 | 第29-30页 |
| 1.4.3 酶法降解 | 第30页 |
| 1.4.4 化学合成 | 第30页 |
| 1.4.5 化学降解 | 第30页 |
| 1.5 GOS的开发利用 | 第30-32页 |
| 1.6 立题意义及研究内容 | 第32-34页 |
| 参考文献 | 第34-43页 |
| 第二章 α-低聚半乳糖的酶法合成及结构鉴定 | 第43-61页 |
| 2.1 材料、试剂和仪器 | 第43-44页 |
| 2.1.1 材料与试剂 | 第43-44页 |
| 2.1.2 主要仪器 | 第44页 |
| 2.2 实验方法 | 第44-47页 |
| 2.2.1 α-半乳糖苷酶酶活力的测定 | 第45页 |
| 2.2.2 α-半乳糖苷酶热稳定性分析 | 第45页 |
| 2.2.3 α-GOS酶法合成反应 | 第45页 |
| 2.2.4 酶法合成产物检测方法 | 第45-46页 |
| 2.2.5 酶法合成产物分离纯化 | 第46页 |
| 2.2.6 酶法合成产物结构鉴定 | 第46-47页 |
| 2.2.7 酶法合成反应条件优化 | 第47页 |
| 2.3 结果与分析 | 第47-58页 |
| 2.3.1 α-半乳糖苷酶酶活力及稳定性 | 第48页 |
| 2.3.2 酶法合成反应产物分析 | 第48-49页 |
| 2.3.3 未知化合物的结构鉴定 | 第49-57页 |
| 2.3.4 酶法合成反应条件的优化 | 第57-58页 |
| 2.4 本章小结 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-61页 |
| 第三章 α-低聚半乳糖的肠道微生态调节作用 | 第61-83页 |
| 3.1 材料、试剂和仪器 | 第61-63页 |
| 3.1.1 实验材料 | 第62页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第62页 |
| 3.1.3 主要仪器 | 第62-63页 |
| 3.1.4 主要探针 | 第63页 |
| 3.2 实验方法 | 第63-66页 |
| 3.2.1 培养基与试剂配置 | 第63-64页 |
| 3.2.2 体外厌氧粪样混合培养 | 第64页 |
| 3.2.3 肠道菌群的FISH计数 | 第64-65页 |
| 3.2.4 SCFAs的测定 | 第65-66页 |
| 3.2.5 统计分析 | 第66页 |
| 3.3 结果与分析 | 第66-77页 |
| 3.3.1 厌氧发酵体系中肠道菌群的变化 | 第66-73页 |
| 3.3.2 厌氧发酵体系中短链脂肪酸的变化 | 第73-77页 |
| 3.4 讨论 | 第77-78页 |
| 3.5 本章小结 | 第78-79页 |
| 参考文献 | 第79-83页 |
| 第四章 α-低聚半乳糖的体外免疫调节活性 | 第83-95页 |
| 4.1 材料、试剂和仪器 | 第83-84页 |
| 4.1.1 实验材料 | 第83-84页 |
| 4.1.2 实验细胞株 | 第84页 |
| 4.1.3 主要试剂 | 第84页 |
| 4.1.4 主要仪器 | 第84页 |
| 4.2 实验方法 | 第84-86页 |
| 4.2.1 培养基与试剂配置 | 第84-85页 |
| 4.2.2 RAW264.7细胞培养 | 第85页 |
| 4.2.3 RAW264.7细胞增殖实验 | 第85页 |
| 4.2.4 吞噬中性红实验 | 第85-86页 |
| 4.2.5 NO释放量的测定 | 第86页 |
| 4.2.6 细胞因子的测定 | 第86页 |
| 4.2.7 统计分析 | 第86页 |
| 4.3 结果与分析 | 第86-90页 |
| 4.3.1 RAW264.7细胞增殖实验 | 第86页 |
| 4.3.2 吞噬中性红实验 | 第86-87页 |
| 4.3.3 不同处理组RAW 264.7细胞NO释放量影响 | 第87-88页 |
| 4.3.4 不同处理组RAW 264.7细胞因子释放量影响 | 第88-90页 |
| 4.4 讨论 | 第90-91页 |
| 4.5 本章小结 | 第91-92页 |
| 参考文献 | 第92-95页 |
| 第五章 α-低聚半乳糖对葡聚糖硫酸钠引起的急性结肠炎的抑制作用 | 第95-115页 |
| 5.1 材料、试剂和仪器 | 第96-97页 |
| 5.1.1 实验材料 | 第96页 |
| 5.1.2 实验动物 | 第96页 |
| 5.1.3 动物饲料 | 第96页 |
| 5.1.4 主要试剂 | 第96页 |
| 5.1.5 主要仪器 | 第96-97页 |
| 5.2 实验方法 | 第97-100页 |
| 5.2.1 动物实验设计 | 第97-98页 |
| 5.2.2 粪便血红素含量的测定 | 第98页 |
| 5.2.3 结肠组织病理学分析 | 第98-99页 |
| 5.2.4 肠道RNA提取及实时荧光定量PCR分析 | 第99页 |
| 5.2.5 结肠组织的免疫组织化学分析 | 第99-100页 |
| 5.2.6 统计分析 | 第100页 |
| 5.3 结果与分析 | 第100-108页 |
| 5.3.1 食物和水摄入情况 | 第100-101页 |
| 5.3.2 体重变化 | 第101-102页 |
| 5.3.3 固态粪便重量变化 | 第102-103页 |
| 5.3.4 α-GOSg和RFOs对粪便中血红素含量的影响 | 第103页 |
| 5.3.5 α-GOSg和RFOs抑制急性结肠炎引起的结肠缩短 | 第103-104页 |
| 5.3.6 结肠组织的病理学分析 | 第104-105页 |
| 5.3.7 定量PCR分析炎症因子表达水平 | 第105-106页 |
| 5.3.8 免疫组织化学分析 | 第106-108页 |
| 5.4 讨论 | 第108-109页 |
| 5.5 本章小结 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-115页 |
| 第六章 α-低聚半乳糖对西式高糖高脂饮食诱导的代谢综合征的作用 | 第115-137页 |
| 6.1 材料、试剂和仪器 | 第115-117页 |
| 6.1.1 实验材料 | 第115-116页 |
| 6.1.2 实验动物 | 第116页 |
| 6.1.3 动物饲料 | 第116页 |
| 6.1.4 主要试剂 | 第116页 |
| 6.1.5 主要仪器 | 第116-117页 |
| 6.2 实验方法 | 第117-120页 |
| 6.2.1 动物实验设计 | 第117页 |
| 6.2.2 血清中生化指标分析 | 第117-118页 |
| 6.2.3 肝脏组织病理学分析 | 第118页 |
| 6.2.4 组织脂质含量分析 | 第118页 |
| 6.2.5 胆汁酸含量测定 | 第118-119页 |
| 6.2.6 实时荧光定量PCR分析 | 第119-120页 |
| 6.2.7 统计分析 | 第120页 |
| 6.3 结果与分析 | 第120-131页 |
| 6.3.1 食物和水摄入情况 | 第120-121页 |
| 6.3.2 体重和体脂变化 | 第121-122页 |
| 6.3.3 α-GOSg和RFOs对血糖和胰岛素水平的影响 | 第122-124页 |
| 6.3.4 血液生化指标分析 | 第124-125页 |
| 6.3.5 α-GOSg和RFOs对抑制脂肪肝的作用 | 第125-128页 |
| 6.3.6 粪便脂质含量分析 | 第128页 |
| 6.3.7 α-GOSg和RFOs对胆汁酸代谢的影响 | 第128-129页 |
| 6.3.8 脂代谢基因表达水平 | 第129-130页 |
| 6.3.9 粪便菌群微生物分析 | 第130-131页 |
| 6.4 讨论 | 第131-132页 |
| 6.5 本章小结 | 第132-133页 |
| 参考文献 | 第133-137页 |
| 全文结论与展望 | 第137-139页 |
| 论文创新点 | 第139-141页 |
| 附录 | 第141-145页 |
| 致谢 | 第145-147页 |
| 博士期间论文发表和专利申请情况 | 第147页 |
