| 摘要 | 第3-5页 |
| ABSTRACT | 第5-7页 |
| 第1章 文献综述 | 第12-18页 |
| 1.1 药食两用植物淫羊藿简介 | 第12-13页 |
| 1.2 降血糖与抗氧化的关系 | 第13页 |
| 1.3 植物多糖降血糖活性研究进展 | 第13-14页 |
| 1.4 植物糖蛋白降血糖活性研究进展 | 第14-15页 |
| 1.5 淫羊藿在调理糖尿病方面的应用 | 第15页 |
| 1.6 选题依据与研究意义 | 第15-17页 |
| 1.7 研究内容 | 第17-18页 |
| 第2章 淫羊藿多糖的超声波/微波协同提取、分级纯化与性质表征 | 第18-30页 |
| 2.1 引言 | 第18页 |
| 2.2 材料与设备 | 第18-19页 |
| 2.2.1 试验材料与试剂 | 第18页 |
| 2.2.2 试验设备 | 第18-19页 |
| 2.3 试验方法 | 第19-22页 |
| 2.3.1 材料前处理 | 第19页 |
| 2.3.2 超声波/微波协同提取法(UMSE) | 第19页 |
| 2.3.3 微波辅助提取法(MAE) | 第19-20页 |
| 2.3.4 超声辅助提取法(UAE) | 第20页 |
| 2.3.5 热水提取法(HWE) | 第20页 |
| 2.3.6 多糖定量方法 | 第20-21页 |
| 2.3.7 多糖纯化方法 | 第21页 |
| 2.3.8 多糖性质表征方法 | 第21-22页 |
| 2.3.8.1 Molish试验方法 | 第21页 |
| 2.3.8.2 碘-淀粉试验方法 | 第21页 |
| 2.3.8.3 Fehling试验方法 | 第21-22页 |
| 2.3.9 多糖梯度分级醇沉方法 | 第22页 |
| 2.3.10 数据统计 | 第22页 |
| 2.4 结果与分析 | 第22-28页 |
| 2.4.1 提取参数对淫羊藿多糖提取量的影响 | 第22-25页 |
| 2.4.2 UMSE条件的优化 | 第25-26页 |
| 2.4.3 UMSE与传统提取方法的比较 | 第26-27页 |
| 2.4.4 多糖的纯化与性质表征 | 第27-28页 |
| 2.4.5 多糖的分级醇沉结果 | 第28页 |
| 2.5 小结 | 第28-30页 |
| 第3章 淫羊藿多糖抗氧化、降血糖活性分析 | 第30-44页 |
| 3.1 引言 | 第30页 |
| 3.2 材料与设备 | 第30-32页 |
| 3.2.1 试验材料与试剂 | 第30-31页 |
| 3.2.2 试验设备 | 第31-32页 |
| 3.3 试验方法 | 第32-36页 |
| 3.3.1 抗氧化活性研究方法 | 第32-33页 |
| 3.3.1.1 淫羊藿多糖清除DPPH自由基的试验方法 | 第32页 |
| 3.3.1.2 淫羊藿多糖清除ABTS自由基的试验方法 | 第32-33页 |
| 3.3.2 α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶活性测定方法 | 第33-34页 |
| 3.3.2.1 淫羊藿多糖抑制α-淀粉酶的试验方法 | 第33页 |
| 3.3.2.2 淫羊藿多糖抑制α-葡萄糖苷酶的试验方法 | 第33-34页 |
| 3.3.3 体内降血糖活性研究方法 | 第34-35页 |
| 3.3.3.1 确定STZ诱导小鼠高血糖模型剂量的方法 | 第34页 |
| 3.3.3.2 高血糖模型小鼠的诱导、分组与处理方法 | 第34页 |
| 3.3.3.3 模型小鼠生化分析前处理方法 | 第34-35页 |
| 3.3.3.4 小鼠糖化血清蛋白含量的测量方法 | 第35页 |
| 3.3.3.5 小鼠谷胱甘肽过氧化物酶的测量方法 | 第35页 |
| 3.3.3.6 小鼠丙二醛含量的测量方法 | 第35页 |
| 3.3.4 数据统计 | 第35-36页 |
| 3.4 结果与分析 | 第36-42页 |
| 3.4.1 淫羊藿多糖的体外抗氧化活性 | 第36页 |
| 3.4.2 淫羊藿多糖的体外降血糖活性 | 第36-37页 |
| 3.4.3 淫羊藿多糖的体内降血糖活性 | 第37-42页 |
| 3.4.3.1 淫羊藿多糖对糖尿病模型小鼠并发症的影响 | 第37-38页 |
| 3.4.3.2 淫羊蕾多糖对糖尿病模型小鼠血糖的影响 | 第38-41页 |
| 3.4.3.3 淫羊藿多糖对糖尿病模型小鼠脏体比的影响 | 第41页 |
| 3.4.3.4 淫羊藿多糖对糖尿病模型小鼠抗氧化体系的影响 | 第41-42页 |
| 3.5 小结 | 第42-44页 |
| 第4章 淫羊藿糖蛋白的提取纯化与性质表征 | 第44-58页 |
| 4.1 引言 | 第44页 |
| 4.2 材料与设备 | 第44-45页 |
| 4.2.1 试验材料与试剂 | 第44页 |
| 4.2.2 试验设备 | 第44-45页 |
| 4.3 试验方法 | 第45-50页 |
| 4.3.1 糖蛋白的提取方法 | 第45页 |
| 4.3.2 糖蛋白的纯化方法 | 第45-47页 |
| 4.3.2.1 透析方法 | 第45页 |
| 4.3.2.2 脱蛋白方法 | 第45-46页 |
| 4.3.2.3 大孔吸附树脂分离纯化方法 | 第46-47页 |
| 4.3.2.3.1 大孔吸附树脂预处理方法 | 第46页 |
| 4.3.2.3.2 大孔吸附树脂筛选方法 | 第46页 |
| 4.3.2.3.3 静态吸附动力学确定吸附时间的方法 | 第46页 |
| 4.3.2.3.4 动态吸附动力学优化分离纯化条件的方法 | 第46-47页 |
| 4.3.2.3.5 糖蛋白的柱层析分级方法 | 第47页 |
| 4.3.3 糖蛋白含量的测定方法 | 第47-48页 |
| 4.3.3.1 苯酚硫酸法测糖含量 | 第47页 |
| 4.3.3.2 考马斯亮蓝法(Bradford法)测蛋白浓度 | 第47-48页 |
| 4.3.4 糖蛋白的SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳方法 | 第48页 |
| 2.3.4.1 样品的预处理方法 | 第48页 |
| 2.3.4.2 糖蛋白的SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳方法 | 第48页 |
| 2.3.4.3 凝胶染色方法 | 第48页 |
| 4.3.5 糖蛋白等电点的测定方法 | 第48-49页 |
| 4.3.6 薄层色谱法(TLC) | 第49页 |
| 4.3.6.1 糖蛋白的水解处理 | 第49页 |
| 4.3.6.2 糖蛋白单糖组成分析方法 | 第49页 |
| 4.3.7 β-消除反应方法 | 第49-50页 |
| 4.4 结果与分析 | 第50-56页 |
| 4.4.1 淫羊蕾糖蛋白的分离纯化 | 第50-54页 |
| 4.4.1.1 树脂的筛选 | 第50-51页 |
| 4.4.1.2 吸附时间的选择 | 第51页 |
| 4.4.1.3 上样浓度的优化 | 第51-52页 |
| 4.4.1.4 上样流速的优化 | 第52-53页 |
| 4.4.1.5 糖蛋白组分的分离 | 第53-54页 |
| 4.4.2 淫羊藿糖蛋白的性质表征 | 第54-56页 |
| 4.4.2.1 SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分析 | 第54页 |
| 4.4.2.2 单糖组成分析 | 第54-55页 |
| 4.4.2.3 糖肽键类型分析 | 第55页 |
| 4.4.2.4 等电点分析 | 第55-56页 |
| 4.5 小结 | 第56-58页 |
| 第5章 淫羊藿糖蛋白的抗氧化活性及其对α-淀粉酶、α-葡萄糖苷酶活力的影响 | 第58-64页 |
| 5.1 引言 | 第58页 |
| 5.2 材料与设备 | 第58-59页 |
| 5.2.1 试验材料与试剂 | 第58页 |
| 5.2.2 试验设备 | 第58-59页 |
| 5.3 试验方法 | 第59页 |
| 5.3.1 组分Ⅱ糖蛋白清除DPPH自由基的试验方法 | 第59页 |
| 5.3.2 组分Ⅱ糖蛋白清除ABTS自由基的试验方法 | 第59页 |
| 5.3.3 组分Ⅱ糖蛋白抑制α-淀粉酶的试验方法 | 第59页 |
| 5.3.4 组分Ⅱ糖蛋白抑制α-葡萄糖苷酶的试验方法 | 第59页 |
| 5.4 结果与分析 | 第59-62页 |
| 5.4.1 糖蛋白对DPPH自由基的清除作用 | 第59-60页 |
| 5.4.2 糖蛋白对ABTS自由基的清除作用 | 第60-61页 |
| 5.4.3 糖蛋白对α-淀粉酶的抑制作用 | 第61页 |
| 5.4.4 糖蛋白对α-葡萄糖苷酶的抑制作用 | 第61-62页 |
| 5.5 小结 | 第62-64页 |
| 结论与展望 | 第64-66页 |
| 小结 | 第64页 |
| 展望 | 第64-66页 |
| 参考文献 | 第66-76页 |
| 致谢 | 第76-78页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第78页 |
