| 摘要 | 第3-8页 |
| ABSTRACT | 第8-13页 |
| 第1章 绪论 | 第17-28页 |
| 1.1 肉制品的微生物腐败 | 第17-20页 |
| 1.1.1 牛肉中的特定腐败菌 | 第17页 |
| 1.1.2 腐败菌鉴定方法 | 第17-18页 |
| 1.1.3 牛肉中主要腐败菌 | 第18-20页 |
| 1.2 生物被膜 | 第20-23页 |
| 1.2.1 生物被膜定义及功能 | 第20-21页 |
| 1.2.2 食品中的生物被膜 | 第21页 |
| 1.2.3 肉制品中生物被膜 | 第21-23页 |
| 1.3 植物提取物调控致腐性和生物被膜 | 第23-27页 |
| 1.3.1 植物抑菌剂的开发和利用 | 第23-24页 |
| 1.3.2 植物提取物对致腐性影响 | 第24页 |
| 1.3.3 植物提取物对生物被膜影响 | 第24页 |
| 1.3.4 植物提取物的抑菌成分和机制 | 第24-25页 |
| 1.3.5 肉桂醛及其抑菌活性 | 第25-27页 |
| 1.4 本课题的研究目的、意义和内容 | 第27-28页 |
| 第2章 冷鲜牛肉货架期和腐败菌群落的分析 | 第28-43页 |
| 2.1 前言 | 第28页 |
| 2.2 材料与设备 | 第28-29页 |
| 2.2.1 原料 | 第28-29页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第29页 |
| 2.2.3 主要设备 | 第29页 |
| 2.3 实验方法 | 第29-33页 |
| 2.3.1 冷鲜牛肉货架期检测 | 第29-31页 |
| 2.3.2 高通量测序鉴定牛肉微生物群落结构变化 | 第31-32页 |
| 2.3.3 培养方法鉴定牛肉微生物群落结构变化 | 第32页 |
| 2.3.4 数据处理和分析 | 第32-33页 |
| 2.4 结果与分析 | 第33-41页 |
| 2.4.1 牛肉货架期检测 | 第33-34页 |
| 2.4.2 牛肉贮藏期间菌落数变化 | 第34页 |
| 2.4.3 牛肉感官评分与理化及微生物指标的相关性分析 | 第34-35页 |
| 2.4.4 培养依赖16sDNA鉴定牛肉微生物群落变化 | 第35-40页 |
| 2.4.5 高通量测序鉴定牛肉微生物群落结构变化 | 第40-41页 |
| 2.5 讨论 | 第41-43页 |
| 第3章 冷鲜牛肉优势菌的致腐性和生物被膜形成分析 | 第43-61页 |
| 3.1 前言 | 第43页 |
| 3.2 材料与设备 | 第43-44页 |
| 3.2.1 原料 | 第43页 |
| 3.2.2 培养基和主要试剂 | 第43-44页 |
| 3.2.3 仪器设备 | 第44页 |
| 3.3 实验方法 | 第44-47页 |
| 3.3.1 无菌牛肉汁的制备和接种 | 第44页 |
| 3.3.2 腐败圈测定 | 第44-45页 |
| 3.3.3 生长曲线的测定 | 第45页 |
| 3.3.4 感官评分 | 第45页 |
| 3.3.5 蛋白酶活性的检测 | 第45页 |
| 3.3.6 挥发性盐基氮的变化 | 第45页 |
| 3.3.7 pH值检测 | 第45页 |
| 3.3.8 结晶紫法检测生物被膜 | 第45-46页 |
| 3.3.9 胞外多糖(EPS)含量测定 | 第46页 |
| 3.3.10 珠涡流法 | 第46页 |
| 3.3.11 泳动性测定 | 第46页 |
| 3.3.12 接种实验 | 第46-47页 |
| 3.4 结果与分析 | 第47-58页 |
| 3.4.1 三类优势菌腐败圈筛选 | 第47-48页 |
| 3.4.2 三类优势菌在牛肉汁中的生长曲线 | 第48-49页 |
| 3.4.3 三类优势菌在牛肉汁中的感官评分 | 第49-50页 |
| 3.4.4 三类优势菌在牛肉汁中的蛋白酶活性 | 第50-51页 |
| 3.4.5 三类优势菌在牛肉汁中的挥发性盐基氮 | 第51页 |
| 3.4.6 三类优势菌在牛肉汁中的pH值 | 第51-52页 |
| 3.4.7 三类优势菌生物被膜形成能力 | 第52-54页 |
| 3.4.8 三类优势菌菌体的泳动性 | 第54-55页 |
| 3.4.9 三株假单胞菌在牛肉中致腐性评价 | 第55-58页 |
| 3.5 讨论 | 第58-61页 |
| 第4章 顺反式肉桂醛对特定腐败菌致腐性和生物被膜的抑制作用 | 第61-76页 |
| 4.1 引言 | 第61页 |
| 4.2 材料与仪器 | 第61-62页 |
| 4.2.1 原料 | 第61-62页 |
| 4.2.2 主要试剂 | 第62页 |
| 4.2.3 主要仪器 | 第62页 |
| 4.3 实验方法 | 第62-65页 |
| 4.3.1 抑菌活性测定 | 第62页 |
| 4.3.2 MIC测定 | 第62页 |
| 4.3.3 结晶紫法检测细菌生物被膜 | 第62-63页 |
| 4.3.4 细菌粘附测定 | 第63页 |
| 4.3.5 共聚焦显微镜观察生物被膜结构 | 第63页 |
| 4.3.6 细菌胞外酶测定 | 第63页 |
| 4.3.7 亚抑菌浓度对细菌运动性的影响 | 第63页 |
| 4.3.8 亚抑菌浓度对细菌噬铁素的影响 | 第63-64页 |
| 4.3.9 荧光定量PCR检测 | 第64-65页 |
| 4.3.10 数据处理和制图 | 第65页 |
| 4.4 结果与分析 | 第65-74页 |
| 4.4.1 顺反式肉桂醛对隆德假单胞菌抑菌活性 | 第65-66页 |
| 4.4.2 顺反式肉桂醛对隆德假单胞菌的MIC | 第66页 |
| 4.4.3 顺反式肉桂醛对菌体生物被膜形成的影响 | 第66-67页 |
| 4.4.4 顺反式肉桂醛对细菌粘附的影响 | 第67-68页 |
| 4.4.5 顺反式肉桂醛对细菌运动性的影响 | 第68-69页 |
| 4.4.6 CLSM观察生物被膜的结构 | 第69-70页 |
| 4.4.7 顺反式肉桂醛对细菌噬铁素的影响 | 第70-71页 |
| 4.4.8 肉桂醛对细菌胞外蛋白酶和脂肪酶的影响 | 第71页 |
| 4.4.9 肉桂醛对细菌基因表达量的影响 | 第71-74页 |
| 4.5 讨论 | 第74-76页 |
| 第5章 总结、展望和创新点 | 第76-78页 |
| 5.1 总结 | 第76页 |
| 5.2 创新点 | 第76-77页 |
| 5.3 展望 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-89页 |
| 致谢 | 第89-90页 |
| 附录Ⅰ 英文缩略词对照表 | 第90-91页 |
| 硕士期间完成的论文 | 第91-92页 |
