| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第1章 引言 | 第11-18页 |
| 1.1 淡水鱼类加工副产物的利用现状 | 第11页 |
| 1.2 鱼类胶原的结构、功能性质及其应用 | 第11-15页 |
| 1.2.1 胶原的结构 | 第11-12页 |
| 1.2.2 鱼类胶原的功能性质 | 第12-14页 |
| 1.2.3 鱼类胶原的应用 | 第14-15页 |
| 1.3 鱼类胶原膜的研究现状 | 第15-17页 |
| 1.3.1 鱼类胶原膜 | 第15页 |
| 1.3.2 鱼类明胶膜 | 第15-17页 |
| 1.4 研究目的和意义 | 第17页 |
| 1.5 研究内容 | 第17-18页 |
| 第2章 材料与方法 | 第18-31页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-21页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第18页 |
| 2.1.2 主要试剂与耗材 | 第18-19页 |
| 2.1.3 溶液配制 | 第19-20页 |
| 2.1.4 主要仪器设备 | 第20-21页 |
| 2.2 实验方法 | 第21-31页 |
| 2.2.1 淡水鱼皮酸溶性胶原的提取 | 第21页 |
| 2.2.2 胶原理化性质和酶解图谱 | 第21-23页 |
| 2.2.3 淡水鱼皮胶原膜的制备 | 第23页 |
| 2.2.4 罗非鱼皮明胶的提取 | 第23页 |
| 2.2.5 明胶膜的制备 | 第23页 |
| 2.2.6 淡水鱼皮胶原膜和明胶膜理化性质的测定 | 第23-25页 |
| 2.2.7 鲢鱼Ⅰ型胶原α基因(COL1A1和COL1A2)cDNA全序列克隆 | 第25-29页 |
| 2.2.8 胶原水解物(CH)-明胶膜的制备 | 第29页 |
| 2.2.9 傅立叶变换红外光谱(FTIR)分析 | 第29页 |
| 2.2.10 明胶膜中CH释放速率的测定 | 第29-30页 |
| 2.2.11 角质细胞的培养和细胞活力测定 | 第30页 |
| 2.2.12 数据统计与分析 | 第30-31页 |
| 第3章 结果与讨论 | 第31-62页 |
| 3.1 淡水鱼皮胶原的提取和性质分析 | 第31-37页 |
| 3.1.1 胶原的SDS-PAGE | 第31页 |
| 3.1.2 氨基酸组成分析 | 第31-32页 |
| 3.1.3 紫外吸收光谱 | 第32-33页 |
| 3.1.4 酶解图谱分析 | 第33-34页 |
| 3.1.5 粘度和热变性温度 | 第34-36页 |
| 3.1.6 成纤维速率 | 第36页 |
| 3.1.7 小结 | 第36-37页 |
| 3.2 淡水鱼皮胶原膜的理化性质和胶原的一级结构 | 第37-47页 |
| 3.2.1 机械性能 | 第37-38页 |
| 3.2.2 颜色和透光率 | 第38页 |
| 3.2.3 热稳定性 | 第38-39页 |
| 3.2.4 圆二色光谱(CD光谱) | 第39-40页 |
| 3.2.5 微观结构分析 | 第40-41页 |
| 3.2.6 鲢鱼Ⅰ型胶原基因的克隆和生物信息学分析 | 第41-46页 |
| 3.2.7 小结 | 第46-47页 |
| 3.3 罗非鱼皮明胶膜的制备和性质改良 | 第47-53页 |
| 3.3.1 pH和双醛淀粉(DAS)的添加对明胶膜性质的影响 | 第47-50页 |
| 3.3.2 pH和DAS的添加对明胶膜蛋白组分的影响 | 第50页 |
| 3.3.3 DAS添加量对明胶膜性质的影响 | 第50-52页 |
| 3.3.4 DAS添加量对明胶膜蛋白组分的影响 | 第52-53页 |
| 3.3.5 小结 | 第53页 |
| 3.4 胶原水解物(CH)对明胶膜理化性质和皮肤角质细胞生长的影响 | 第53-62页 |
| 3.4.1 CH对明胶膜性质的影响 | 第53-55页 |
| 3.4.2 CH对明胶膜蛋白组分的影响 | 第55-56页 |
| 3.4.3 傅立叶变换红外光谱(FTIR)分析 | 第56-59页 |
| 3.4.4 CH的释放速率 | 第59页 |
| 3.4.5 CH对皮肤角质细胞生长的影响 | 第59-61页 |
| 3.4.6 小结 | 第61-62页 |
| 第4章 结论与展望 | 第62-64页 |
| 4.1 结论 | 第62-63页 |
| 4.2 展望 | 第63-64页 |
| 论文创新点 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65-66页 |
| 参考文献 | 第66-72页 |
| 在学期间发表的学术论文及专利 | 第72页 |
