| 摘要 | 第4-6页 |
| abstract | 第6-7页 |
| 第1章 绪论 | 第13-18页 |
| 1.1 鲍鱼的研究进展 | 第13-14页 |
| 1.1.1 鲍鱼 | 第13页 |
| 1.1.2 鲍鱼的价值 | 第13页 |
| 1.1.3 鲍鱼的加工 | 第13-14页 |
| 1.2 鲍鱼内脏的研究现状 | 第14-16页 |
| 1.2.1 鲍鱼内脏蛋白的研究现状 | 第14-15页 |
| 1.2.2 鲍鱼内脏油脂的研究现状 | 第15页 |
| 1.2.3 鲍鱼内脏多糖的研究进展 | 第15-16页 |
| 1.3 研究目的和意义 | 第16-18页 |
| 第2章 超临界CO_2萃取鲍鱼内脏油脂及其脂肪酸种类鉴定 | 第18-32页 |
| 2.1 实验材料 | 第18-19页 |
| 2.1.1 实验原料 | 第18页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第18页 |
| 2.1.3 主要仪器设备 | 第18-19页 |
| 2.2 实验方法 | 第19-21页 |
| 2.2.1 原料预处理 | 第19页 |
| 2.2.2 鲍鱼内脏水分含量测定 | 第19页 |
| 2.2.3 鲍鱼内脏总脂肪提取 | 第19页 |
| 2.2.4 超临界CO_2萃取鲍鱼内脏油脂 | 第19页 |
| 2.2.5 超临界CO_2萃取条件优化 | 第19-20页 |
| 2.2.6 鲍鱼内脏油脂的皂化和甲酯化 | 第20页 |
| 2.2.7 脂肪酸的分析 | 第20-21页 |
| 2.3 结果与分析 | 第21-31页 |
| 2.3.1 单因素试验结果 | 第21-24页 |
| 2.3.2 Box-Behnken试验设计方案与响应面分析 | 第24-27页 |
| 2.3.3 脂肪酸分析 | 第27-31页 |
| 2.4 本章小结 | 第31-32页 |
| 第3章 鲍鱼内脏多糖提取工艺的研究 | 第32-49页 |
| 3.1 实验材料 | 第32-33页 |
| 3.1.1 实验原料 | 第32页 |
| 3.1.2 主要试剂 | 第32页 |
| 3.1.3 主要仪器设备 | 第32-33页 |
| 3.2 实验方法 | 第33-36页 |
| 3.2.1 鲍鱼内脏基本组成测定 | 第33页 |
| 3.2.2 鲍鱼内脏多糖提取工艺流程 | 第33-34页 |
| 3.2.3 酶法提取鲍鱼内脏多糖 | 第34-36页 |
| 3.3 结果与分析 | 第36-48页 |
| 3.3.1 鲍鱼内脏基本组成 | 第36页 |
| 3.3.2 鲍鱼内脏多糖的提取 | 第36-48页 |
| 3.4 本章小结 | 第48-49页 |
| 第4章 鲍鱼内脏多糖的分离纯化 | 第49-66页 |
| 4.1 实验材料 | 第49-50页 |
| 4.1.1 实验原料 | 第49页 |
| 4.1.2 主要试剂及器材 | 第49页 |
| 4.1.3 主要仪器设备 | 第49-50页 |
| 4.2 实验方法 | 第50-54页 |
| 4.2.1 蛋白质和多糖的测定 | 第50页 |
| 4.2.2 Sevage法脱蛋白 | 第50-51页 |
| 4.2.3 三氯乙酸法脱蛋白 | 第51页 |
| 4.2.4 酶法脱蛋白 | 第51-52页 |
| 4.2.5 树脂法脱蛋白 | 第52-53页 |
| 4.2.6 几种脱蛋白方法比较 | 第53页 |
| 4.2.7 鲍鱼内脏多糖葡聚糖凝胶柱层析 | 第53页 |
| 4.2.8 鲍鱼内脏多糖组分纯度鉴定 | 第53-54页 |
| 4.3 结果与分析 | 第54-65页 |
| 4.3.1 Sevage法脱蛋白结果 | 第54页 |
| 4.3.2 三氯乙酸法脱蛋白结果 | 第54-55页 |
| 4.3.3 酶法脱蛋白结果 | 第55-59页 |
| 4.3.4 树脂脱蛋白实验结果 | 第59-63页 |
| 4.3.5 SephadexG-75凝胶柱层析 | 第63页 |
| 4.3.6 鲍鱼内脏多糖组分纯度鉴定结果 | 第63-65页 |
| 4.4 本章小结 | 第65-66页 |
| 第5章 鲍鱼内脏多糖理化性质和结构分析 | 第66-73页 |
| 5.1 实验材料 | 第66-67页 |
| 5.1.1 实验原料 | 第66页 |
| 5.1.2 主要试剂 | 第66页 |
| 5.1.3 主要仪器设备 | 第66-67页 |
| 5.2 实验方法 | 第67-68页 |
| 5.2.1 测定方法 | 第67页 |
| 5.2.2 鲍鱼内脏多糖组分基本组成测定 | 第67页 |
| 5.2.3 鲍鱼内脏多糖组分相对分子质量的测定 | 第67页 |
| 5.2.4 鲍鱼内脏多糖组分傅里叶红外光谱测定 | 第67-68页 |
| 5.2.5 鲍鱼内脏多糖组分单糖组成测定 | 第68页 |
| 5.3 结果与分析 | 第68-72页 |
| 5.3.1 鲍鱼内脏多糖组分基本组成测定结果 | 第68页 |
| 5.3.2 鲍鱼内脏多糖组分相对分子质量测定结果 | 第68-69页 |
| 5.3.3 鲍鱼内脏多糖组分傅里叶红外光谱测定结果 | 第69-71页 |
| 5.3.4 鲍鱼内脏多糖组分单糖组成的测定结果 | 第71-72页 |
| 5.4 本章小结 | 第72-73页 |
| 第6章 鲍鱼内脏多糖组分的体外抗氧化活性研究 | 第73-80页 |
| 6.1 实验材料 | 第73-74页 |
| 6.1.1 实验原料 | 第73页 |
| 6.1.2 主要试剂 | 第73页 |
| 6.1.3 主要仪器设备 | 第73-74页 |
| 6.2 实验方法 | 第74-75页 |
| 6.2.1 清除羟自由基(·OH)活性的测定 | 第74页 |
| 6.2.2 清除DPPH自由基(DPPH·)活性的测定 | 第74-75页 |
| 6.2.3 清除超氧阴离子自由基(O_2~-·)活性的测定 | 第75页 |
| 6.3 结果与分析 | 第75-78页 |
| 6.3.1 对羟自由基(·OH)清除作用的结果 | 第75-76页 |
| 6.3.2 对DPPH自由基(DPPH·)清除作用的结果 | 第76-77页 |
| 6.3.3 对超氧阴离子自由基(O_2~-·)清除作用的结果 | 第77-78页 |
| 6.4 本章小结 | 第78-80页 |
| 第7章 结论与展望 | 第80-82页 |
| 7.1 结论 | 第80页 |
| 7.2 展望 | 第80-82页 |
| 致谢 | 第82-83页 |
| 参考文献 | 第83-88页 |
| 在学期间发表的学术论文 | 第88页 |
