| 摘要 | 第3-6页 |
| Abstract | 第6-9页 |
| 第1章 引言 | 第15-31页 |
| 1.1 桃胶 | 第15-17页 |
| 1.1.1 概述 | 第15页 |
| 1.1.2 桃胶多糖 | 第15-16页 |
| 1.1.3 桃胶的功能与应用 | 第16-17页 |
| 1.2 黑木耳及黑木耳多糖 | 第17-18页 |
| 1.3 水凝胶 | 第18-23页 |
| 1.3.1 凝胶的定义及分类 | 第18-21页 |
| 1.3.1.1 pH敏感水凝胶 | 第19-20页 |
| 1.3.1.2 温度敏感水凝胶 | 第20页 |
| 1.3.1.3 光敏感水凝胶 | 第20-21页 |
| 1.3.1.4 其他刺激敏感水凝胶 | 第21页 |
| 1.3.2 水凝胶的制备 | 第21-23页 |
| 1.3.2.1 物理交联 | 第21-22页 |
| 1.3.2.2 化学交联 | 第22-23页 |
| 1.4 肠道益生菌概述 | 第23-28页 |
| 1.4.1 植物乳杆菌 | 第24页 |
| 1.4.2 唾液乳杆菌 | 第24-25页 |
| 1.4.4 生理功能 | 第25-27页 |
| 1.4.4.1 调节肠道菌群,抑制病原菌的生长繁殖 | 第25页 |
| 1.4.4.2 免疫调节作用 | 第25-26页 |
| 1.4.4.3 降解胆固醇,促脂肪消耗 | 第26页 |
| 1.4.4.4 抗衰老 | 第26-27页 |
| 1.4.4.5 抗肿瘤作用 | 第27页 |
| 1.4.4.6 抗过敏效应 | 第27页 |
| 1.4.5 益生菌的包埋及应用 | 第27-28页 |
| 1.5 研究意义 | 第28-29页 |
| 1.6 主要研究内容及创新点 | 第29-31页 |
| 第2章 桃胶多糖的分离纯化及结构分析 | 第31-51页 |
| 2.1 引言 | 第31-32页 |
| 2.2 实验仪器以及材料 | 第32-33页 |
| 2.2.1 实验主要仪器装置 | 第32页 |
| 2.2.2 实验主要试剂材料 | 第32-33页 |
| 2.3 实验方法 | 第33-38页 |
| 2.3.1 桃胶多糖提取 | 第33-34页 |
| 2.3.1.1 桃胶多糖提取 | 第33页 |
| 2.3.1.2 脱色 | 第33-34页 |
| 2.3.1.3 Sevag法去蛋白 | 第34页 |
| 2.3.2 桃胶多糖分离纯化 | 第34-35页 |
| 2.3.2.1 凝胶预处理 | 第34页 |
| 2.3.2.2 上样洗脱 | 第34-35页 |
| 2.3.3 多糖含量测定 | 第35-36页 |
| 2.3.3.1 溶液配制检测 | 第35页 |
| 2.3.3.2 绘制标准曲线 | 第35-36页 |
| 2.3.3.3 样品糖含量测定 | 第36页 |
| 2.3.4 糖醛酸含量测定 | 第36页 |
| 2.3.4.1 标准曲线的绘制 | 第36页 |
| 2.3.4.2 样品糖醛酸含量测定 | 第36页 |
| 2.3.5 傅立叶红外分析 | 第36页 |
| 2.3.6 单糖组成 | 第36-37页 |
| 2.3.6.1 水解及衍生化 | 第36-37页 |
| 2.3.6.2 液相色谱测定条件 | 第37页 |
| 2.3.7 甲基化分析 | 第37-38页 |
| 2.3.7.1 解聚和水解 | 第37-38页 |
| 2.3.7.2 乙酰化 | 第38页 |
| 2.3.7.3 GC-MS分析 | 第38页 |
| 2.3.8 NMR波谱分析 | 第38页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第38-48页 |
| 2.4.1 桃胶多糖的分离和纯化 | 第38-39页 |
| 2.4.2 化学分析 | 第39-41页 |
| 2.4.2.1. 总糖测定 | 第39-40页 |
| 2.4.2.2 糖醛酸测定 | 第40-41页 |
| 2.4.3 单糖组成 | 第41-42页 |
| 2.4.4 傅里叶红外分析 | 第42-43页 |
| 2.4.5 甲基化分析 | 第43-48页 |
| 2.5 本章小结 | 第48-51页 |
| 第3章 基于桃胶多糖的Fe~(3+)交联水凝胶的制备及表征 | 第51-67页 |
| 3.1 引言 | 第51-52页 |
| 3.2 实验仪器以及材料 | 第52-53页 |
| 3.2.1 实验主要仪器装置 | 第52-53页 |
| 3.2.2 实验主要试剂材料 | 第53页 |
| 3.3 实验方法 | 第53-56页 |
| 3.3.1 水凝胶的制备 | 第53-54页 |
| 3.3.2 粒径分析 | 第54页 |
| 3.3.3 光学显微镜及激光共聚焦显微镜观察水凝胶形态 | 第54页 |
| 3.3.4 扫描电镜 | 第54页 |
| 3.3.5 FT-IR表征 | 第54-55页 |
| 3.3.6 凝胶形成过程中的Fe~(2+)和Fe~(3+)的变化分析 | 第55页 |
| 3.3.7 穆斯堡尔光谱分析 | 第55-56页 |
| 3.3.8 Zeta电位测定 | 第56页 |
| 3.3.9 溶胀度测定 | 第56页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第56-65页 |
| 3.4.1 粒径分析 | 第56-57页 |
| 3.4.2 光学显微镜及激光共聚焦显微镜观察微球形态 | 第57-58页 |
| 3.4.3 扫描电镜 | 第58-59页 |
| 3.4.4 FT-IR分析 | 第59-61页 |
| 3.4.5 微球形成过程中的Fe~(2+)和Fe~(3+)的浓度变化分析 | 第61页 |
| 3.4.6 穆斯堡尔光谱分析 | 第61-63页 |
| 3.4.7 Zeta电位分析 | 第63页 |
| 3.4.8 溶胀度分析 | 第63-65页 |
| 3.5 本章小结 | 第65-67页 |
| 第4章 包埋Lactobacillus plantarum CICC20264和Lactobacillus salivarius CICC23174 | 第67-83页 |
| 4.1 仪器与试剂 | 第67-69页 |
| 4.1.1 仪器装置 | 第67-68页 |
| 4.1.2 实验主要试剂材料 | 第68-69页 |
| 4.1.3 培养基 | 第69页 |
| 4.1.4 主要溶液的配置 | 第69页 |
| 4.2 实验方法 | 第69-72页 |
| 4.2.0 菌种的活化与增殖培养 | 第69-70页 |
| 4.2.1 菌种保藏 | 第70页 |
| 4.2.2 益生菌的包埋 | 第70页 |
| 4.2.3 水凝胶中益生菌的释放及包埋率测定 | 第70-71页 |
| 4.2.4 耐胃酸实验 | 第71页 |
| 4.2.5 植物乳杆菌微球耐胆盐实验 | 第71页 |
| 4.2.6 模拟肠胃道释放试验 | 第71-72页 |
| 4.2.7 贮藏稳定性试验 | 第72页 |
| 4.2.8 数据分析 | 第72页 |
| 4.3 结果于讨论 | 第72-81页 |
| 4.3.1 包埋率 | 第72-73页 |
| 4.3.2 耐胃酸分析 | 第73-75页 |
| 4.3.3 耐胆盐分析 | 第75-77页 |
| 4.3.4 模拟释放分析 | 第77-78页 |
| 4.3.5 贮藏稳定性分析 | 第78-81页 |
| 4.4 总结 | 第81-83页 |
| 第5章 结论 | 第83-85页 |
| 5.1 结论 | 第83-84页 |
| 5.2 展望 | 第84-85页 |
| 参考文献 | 第85-98页 |
| 研究生阶段发表的论文 | 第98-99页 |
| 致谢 | 第99-100页 |
