| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略词表 | 第8-11页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-19页 |
| 1.1 酒精性肝损伤研究进展 | 第11-13页 |
| 1.1.1 酒精性肝损伤概述 | 第11页 |
| 1.1.2 酒精性肝损伤发病机理 | 第11-13页 |
| 1.2 酒精性肝损伤的治疗 | 第13-14页 |
| 1.3 酒精性肝损伤模型简介 | 第14-15页 |
| 1.4 分子生物学技术在基因表达研究中的应用 | 第15页 |
| 1.5 食用菌多糖抗氧化功能研究进展 | 第15-17页 |
| 1.6 黑牛杆菌保健功能研究进展 | 第17-18页 |
| 1.7 研究意义及主要内容 | 第18-19页 |
| 第2章 黑牛肝菌多糖体外清除自由基作用 | 第19-29页 |
| 2.1 材料与方法 | 第19-22页 |
| 2.1.1 主要材料 | 第19页 |
| 2.1.2 主要试剂和仪器 | 第19-20页 |
| 2.1.3 主要试剂的配制 | 第20页 |
| 2.1.4 方法 | 第20-22页 |
| 2.1.5 数据处理 | 第22页 |
| 2.2 结果与分析 | 第22-26页 |
| 2.2.1 黑牛肝菌多糖的得率 | 第22-23页 |
| 2.2.2 黑牛肝菌多糖的生物活性成分分析 | 第23页 |
| 2.2.3 黑牛肝菌多糖的DEAE-Cellulose52的柱层析纯化结果 | 第23-24页 |
| 2.2.4 黑牛肝菌纯化多糖的紫外光谱扫描 | 第24页 |
| 2.2.5 黑牛肝菌多糖对·OH的清除作用 | 第24-25页 |
| 2.2.6 黑牛肝菌多糖对O_2~-·的清除作用 | 第25页 |
| 2.2.7 黑牛肝菌多糖还原力的测定 | 第25-26页 |
| 2.3 讨论 | 第26-27页 |
| 2.4 本章小结 | 第27-29页 |
| 第3章 黑牛肝菌多糖对急性酒精肝损伤小鼠生化指标影响 | 第29-42页 |
| 3.1 材料与方法 | 第29-34页 |
| 3.1.1 试剂与仪器 | 第29-31页 |
| 3.1.2 实验动物 | 第31页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第31-34页 |
| 3.1.4 数据统计 | 第34页 |
| 3.2 结果与分析 | 第34-39页 |
| 3.2.1 BAP对酒精所致急性肝损伤小鼠体重和肝脏指数的影响 | 第34-35页 |
| 3.2.2 生化指标的结果分析 | 第35-38页 |
| 3.2.3 病理切片分析 | 第38-39页 |
| 3.3 讨论 | 第39-41页 |
| 3.4 本章小结 | 第41-42页 |
| 第4章 酒精性肝损伤超微结构的观察及相关凋亡基因的表达 | 第42-51页 |
| 4.1 材料、试剂与仪器 | 第42-43页 |
| 4.1.1 BAP的制备 | 第42页 |
| 4.1.2 实验动物 | 第42页 |
| 4.1.3 主要试剂和仪器 | 第42-43页 |
| 4.2 方法 | 第43-44页 |
| 4.2.1 酒精诱导肝损伤动物模型的建立 | 第43页 |
| 4.2.2 透射电镜样本的制备 | 第43页 |
| 4.2.3 荧光实时定量RT-PCR检测相关凋亡基因的表达 | 第43-44页 |
| 4.2.4 数据处理 | 第44页 |
| 4.3 结果与分析 | 第44-48页 |
| 4.3.1 超微结构分析 | 第44-46页 |
| 4.3.2 各组小鼠肝脏组织Bcl-2、Bax和Caspase-3 mRNA的表达 | 第46-48页 |
| 4.4 讨论 | 第48-50页 |
| 4.5 本章小结 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-62页 |
| 全文结论 | 第62-63页 |
| 论文创新点 | 第63-64页 |
| 在读期间发表的学术论文及研究成果 | 第64-65页 |
| 致谢 | 第65页 |
