| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-19页 |
| ·海参 | 第10页 |
| ·海参介绍 | 第10页 |
| ·海参成分 | 第10页 |
| ·水产动物消化酶 | 第10-12页 |
| ·消化酶研究与海参养殖之间的关系 | 第11页 |
| ·海参消化酶的研究现状 | 第11-12页 |
| ·β-葡聚糖酶 | 第12-14页 |
| ·β-葡聚糖酶的来源 | 第12页 |
| ·植物来源的β-葡聚糖酶 | 第12页 |
| ·微生物来源的β-葡聚糖酶 | 第12页 |
| ·动植物来源的β-葡聚糖酶 | 第12页 |
| ·β-葡聚糖酶的分类及作用方式 | 第12-13页 |
| ·β-葡聚糖酶的应用 | 第13-14页 |
| ·在食品工业上的应用 | 第13页 |
| ·在饲料工业中的应用 | 第13-14页 |
| ·在基因工程中的应用 | 第14页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶 | 第14-18页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶的分布 | 第14页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶的研究现状 | 第14-18页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶可诱导性的研究 | 第14-15页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶基因表达调控的研究 | 第15页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶基因工程方面的研究 | 第15-17页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶的纯化 | 第17-18页 |
| ·本课题的主要研究内容 | 第18-19页 |
| 第二章 材料与方法 | 第19-30页 |
| ·实验材料 | 第19-21页 |
| ·实验原料 | 第19页 |
| ·主要实验仪器 | 第19-20页 |
| ·主要实验试剂 | 第20-21页 |
| ·主要试剂的配制 | 第21-23页 |
| ·Folin-酚甲液的配制 | 第21页 |
| ·Folin-酚乙液的配制 | 第21页 |
| ·蛋白质凝胶电泳试剂的配制 | 第21-22页 |
| ·考马斯亮兰染色所需试剂 | 第22-23页 |
| ·活性染色所需试剂 | 第23页 |
| ·实验方法 | 第23-24页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶酶活的测定 | 第23页 |
| ·蛋白质含量的测定 | 第23-24页 |
| ·非变性凝胶电泳 | 第24页 |
| ·活性染色 | 第24页 |
| ·SDS-PAGE电泳 | 第24页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶提取条件的单因素试验 | 第24-26页 |
| ·最佳提取缓冲液pH值的确定 | 第25页 |
| ·最佳提取缓冲液离子强度的确定 | 第25页 |
| ·最佳提取缓冲液体积的确定 | 第25页 |
| ·最佳浸提时间确定 | 第25页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶提取条件的正交试验 | 第25-26页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶沉淀方法的确定 | 第26-27页 |
| ·盐析沉淀法 | 第26页 |
| ·乙醇沉淀法 | 第26页 |
| ·丙酮沉淀法 | 第26-27页 |
| ·透析 | 第27页 |
| ·透析袋的预处理 | 第27页 |
| ·透析法除硫酸铵 | 第27页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶沉淀方法的确定 | 第27-28页 |
| ·DEAE-Sepharose CL-6B离子交换层析 | 第27-28页 |
| ·Butyl-Sepharose 4 Fast Flow疏水层析 | 第28页 |
| ·Native-PAGE分离 | 第28页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶酶学性质的研究 | 第28-30页 |
| ·酶纯度鉴定及分子量测定” | 第28页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶酸碱稳定性” | 第28页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶最适反应pH值的确定 | 第28-29页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶最适反应温度的确定 | 第29页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶的热稳定性 | 第29页 |
| ·金属离子对β-1,3-葡聚糖酶活力的影响 | 第29页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶的反应动力学 | 第29-30页 |
| 第三章 结果与讨论 | 第30-46页 |
| ·标准曲线的绘制 | 第30-31页 |
| ·葡萄糖标准曲线的绘制 | 第30页 |
| ·Folin-酚标准曲线的绘制 | 第30-31页 |
| ·海参肠道β-1,3-葡聚糖酶提取条件的研究 | 第31-35页 |
| ·缓冲液pH值对提取效果的影响 | 第31-32页 |
| ·NaCl浓度对提取效果的影响 | 第32页 |
| ·浸提体积对提取效果的影响 | 第32-33页 |
| ·浸提时间对提取效果的影响 | 第33-34页 |
| ·海参肠道β-1,3-葡聚糖酶的最佳提取工艺条件 | 第34-35页 |
| ·β-1,3-葡聚糖酶的沉淀分离 | 第35-38页 |
| ·硫酸铵饱和度对分离效果的影响 | 第35-36页 |
| ·乙醇浓度对分离效果的影响 | 第36-37页 |
| ·丙酮浓度对分离效果的影响 | 第37页 |
| ·三种方法沉淀分离β-1,3-葡聚糖酶效果的比较 | 第37-38页 |
| ·酶的纯化及鉴定 | 第38-40页 |
| ·DEAE-Sepharose CL-6B阴离子交换层析” | 第38-39页 |
| ·Butyl-Sepharose 4 Fast Flow层析 | 第39页 |
| ·Native-PAGE电泳 | 第39-40页 |
| ·酶学性质的研究 | 第40-46页 |
| ·酶的分子量 | 第40-41页 |
| ·最适反应pH | 第41-42页 |
| ·最适反应温度 | 第42页 |
| ·pH稳定性 | 第42-43页 |
| ·热稳定性 | 第43-44页 |
| ·金属离子对酶活力的影响 | 第44页 |
| ·动力学的研究 | 第44-46页 |
| 第四章 结论 | 第46-47页 |
| 参考文献 | 第47-53页 |
| 致谢 | 第53-54页 |
| 附录 | 第54页 |
