| 摘要 | 第1-5页 |
| ABSTRACT | 第5-8页 |
| 1 前言 | 第8-27页 |
| ·高温大曲简述 | 第8-10页 |
| ·白酒大曲 | 第8页 |
| ·高温大曲 | 第8-9页 |
| ·高温大曲生产工艺简介 | 第9页 |
| ·高温大曲微生物作用 | 第9-10页 |
| ·微生物群落结构研究方法综述 | 第10-18页 |
| ·传统可培养的方法 | 第10-11页 |
| ·微生物群落水平生理学指纹方法(CLPP) | 第11页 |
| ·生物标记方法 | 第11-12页 |
| ·核酸分析方法 | 第12-17页 |
| ·元蛋白质组分析 | 第17-18页 |
| ·变性梯度凝胶电泳技术简介 | 第18-21页 |
| ·DGGE的基本原理 | 第18页 |
| ·DGGE技术的应用工作流程 | 第18-19页 |
| ·DGGE在微生物生态学研究中的应用 | 第19-21页 |
| ·DGGE技术的缺陷 | 第21页 |
| ·DGGE在微生物生态学中的应用前景 | 第21页 |
| ·PCR方法简介 | 第21-23页 |
| ·PCR技术的基本原理 | 第21-22页 |
| ·不同策略的PCR技术简介 | 第22-23页 |
| ·大曲微生物的研究现状及趋势 | 第23-25页 |
| ·大曲微生物研究现状 | 第23-24页 |
| ·大曲微生物研究的发展趋势 | 第24-25页 |
| ·本论文的研究意义及内容 | 第25-27页 |
| ·本论文的研究意义 | 第25-26页 |
| ·本论文的研究内容 | 第26-27页 |
| 2 材料与方法 | 第27-42页 |
| ·实验材料 | 第27-31页 |
| ·高温大曲 | 第27页 |
| ·主要药品 | 第27-28页 |
| ·仪器与设备 | 第28页 |
| ·主要溶液 | 第28-30页 |
| ·主要培养基 | 第30-31页 |
| ·实验方法 | 第31-42页 |
| ·高温大曲性质检测 | 第31-32页 |
| ·高温大曲中细菌总DNA提取方法选择与优化 | 第32-34页 |
| ·带GC发卡结构的总细菌V3可变区PCR条件的选择与优化 | 第34-37页 |
| ·DGGE条件的选择与优化 | 第37-39页 |
| ·DGGE条带的克隆 | 第39-41页 |
| ·序列测定和系统发育分析 | 第41-42页 |
| 3 结果与讨论 | 第42-61页 |
| ·制曲过程高温曲理化性质的变化 | 第42-43页 |
| ·细菌含量的变化 | 第42页 |
| ·糖化力的变化 | 第42-43页 |
| ·水分含量的变化 | 第43页 |
| ·高温大曲中总细菌DNA提取方法的建立 | 第43-46页 |
| ·不同提取方法对DNA粗提产物质量的影响 | 第43-44页 |
| ·不同提取方法对DNA粗提物纯度的影响 | 第44-45页 |
| ·不同提取方法对后期实验适应性的影响 | 第45-46页 |
| ·带GC发卡结构的总细菌V3可变区PCR条件的选择与优化 | 第46-51页 |
| ·常规PCR策略对扩增结果的影响 | 第46-48页 |
| ·降落式PCR对扩增结果的影响 | 第48页 |
| ·巢式PCR对扩增结果的影响 | 第48-50页 |
| ·两种策略对DGGE分析的影响 | 第50-51页 |
| ·DGGE条件的选择与优化 | 第51-52页 |
| ·变性梯度范围的选择 | 第51-52页 |
| ·DGGE电泳时间的选择 | 第52页 |
| ·DGGE分析高温制曲过程中的细菌多样性 | 第52-61页 |
| ·大曲中细菌总DNA提取结果 | 第52-53页 |
| ·大曲细菌总16S rDNA V3区巢式PCR扩增结果 | 第53-54页 |
| ·高温制曲过程DGGE分析 | 第54-55页 |
| ·DGGE条带的克隆测序结果 | 第55-56页 |
| ·DGGE条带同源性比较结果 | 第56-58页 |
| ·系统发育分析 | 第58-61页 |
| 4 结论 | 第61-62页 |
| 5 展望 | 第62-63页 |
| 6 参考文献 | 第63-71页 |
| 7 攻读硕士学位期间发表论文情况 | 第71-72页 |
| 8 致谢 | 第72页 |
