| 中文摘要 | 第2-3页 |
| Abstract | 第3-4页 |
| 中文文摘 | 第5-13页 |
| 绪论 | 第13-23页 |
| 1 白酒的简介 | 第13-14页 |
| 2 高温大曲 | 第14-17页 |
| 2.1 高温大曲的工艺 | 第14页 |
| 2.2 高温大曲中的微生物 | 第14-15页 |
| 2.3 高温大曲中的风味物质 | 第15页 |
| 2.4 高温大曲中的酶体系 | 第15-16页 |
| 2.5 高温大曲在酱香型白酒酿造中的作用 | 第16-17页 |
| 3 现代生物技术在高温大曲研究中的应用 | 第17-20页 |
| 3.1 宏基因组学技术 | 第17页 |
| 3.2 宏蛋白组学技术 | 第17页 |
| 3.3 Biology微平板技术 | 第17-18页 |
| 3.4 16SrDNA基因文库 | 第18页 |
| 3.5 Real-time PCR技术 | 第18-20页 |
| 3.6 分子生态学技术 | 第20页 |
| 4 高温大曲强化功能菌的研究 | 第20-21页 |
| 5 本课题研究的目的和意义 | 第21-23页 |
| 第一章 酱香型白酒强化高温大曲工艺优化及发酵参数变化 | 第23-57页 |
| 第一节 酱香型白酒强化高温大曲的工艺优化 | 第23-39页 |
| 1 材料与方法 | 第23-30页 |
| 1.1 材料 | 第23-25页 |
| 1.2 方法 | 第25-30页 |
| 2 结果与分析 | 第30-39页 |
| 2.1 强化高温大曲的功能菌株的选育 | 第30-32页 |
| 2.2 强化高温大曲工艺的响应面法优化 | 第32-39页 |
| 3 结论 | 第39页 |
| 第二节 两种高温大曲的制曲发酵过程主要参数变化 | 第39-57页 |
| 1 材料与方法 | 第40-45页 |
| 1.1 材料 | 第40-41页 |
| 1.2 方法 | 第41-45页 |
| 2 结果与分析 | 第45-54页 |
| 2.1 高温大曲发酵过程中酶活力变化 | 第45-50页 |
| 2.2 水分变化 | 第50-51页 |
| 2.3 淀粉含量变化 | 第51-52页 |
| 2.4 酸度变化 | 第52-53页 |
| 2.5 温度变化趋势图 | 第53-54页 |
| 3 结论 | 第54-57页 |
| 第二章 Real-time PCR技术分析两种高温大曲和酒醅的主要酿酒微生物变化规律 | 第57-91页 |
| 第一节 Real-time PCR技术分析高温大曲总细菌及强化功能菌变化规律 | 第57-79页 |
| 1 材料与方法 | 第57-62页 |
| 1.1 材料 | 第57-58页 |
| 1.2 方法 | 第58-62页 |
| 2 结果与分析 | 第62-78页 |
| 2.1 样品总DNA提取方法的选择 | 第62-63页 |
| 2.2 高温大曲样品的16SrDNA的扩增结果 | 第63-64页 |
| 2.3 Real-time PCR的特异性引物与细菌通用引物序列 | 第64页 |
| 2.4 Real-time PCR标准曲线 | 第64-66页 |
| 2.5 Real-time PCR的扩增曲线和融解曲线 | 第66-72页 |
| 2.6 高温大曲发酵过程中功能菌数量实时变化 | 第72-78页 |
| 3. 结论 | 第78-79页 |
| 第二节 Real-time PCR技术分析酒醅的主要酿酒微生物变化规律 | 第79-91页 |
| 1 材料与方法 | 第80-81页 |
| 1.1 材料 | 第80页 |
| 1.2 方法 | 第80-81页 |
| 2 结果与分析 | 第81-89页 |
| 2.1 酒醅样品的总DNA提取方法的选择 | 第81-82页 |
| 2.2 酒醅样品16SrDNA的扩增 | 第82页 |
| 2.3 细菌、酵母菌通用引物和功能菌特异性引物序列 | 第82-83页 |
| 2.4 Real-time PCR标准曲线 | 第83页 |
| 2.5 Real-time PCR的扩增曲线和融解曲线 | 第83-87页 |
| 2.6 酒醅发酵过程中总细菌、强化功能菌和酵母菌数量实时变化 | 第87-89页 |
| 3 结论 | 第89-91页 |
| 第三章 两种高温大曲酿酒微生物区系结构和蛋白组学初步分析 | 第91-129页 |
| 第一节 两种高温大曲细菌区系结构比较分析 | 第91-106页 |
| 1. 材料与方法 | 第91-93页 |
| 1.1 材料 | 第91-92页 |
| 1.2 方法 | 第92-93页 |
| 2 结果与分析 | 第93-105页 |
| 2.1 高温大曲样品基因组DNA检测结果 | 第93-94页 |
| 2.2 PCR扩增结果 | 第94页 |
| 2.3 细菌OTU聚类分析 | 第94-95页 |
| 2.4 高温大曲细菌区系α多样性分析 | 第95-97页 |
| 2.5 高温大曲细菌区系组成及β多样性分析 | 第97-105页 |
| 3 结论 | 第105-106页 |
| 第二节 两种高温大曲真菌区系结构比较分析 | 第106-118页 |
| 1. 材料与方法 | 第107-108页 |
| 1.1 材料 | 第107页 |
| 1.2 方法 | 第107-108页 |
| 2 结果与分析 | 第108-117页 |
| 2.1 高温大曲样品基因组DNA检测结果 | 第108页 |
| 2.2 PCR扩增结果 | 第108-109页 |
| 2.3 真菌OTU聚类分析 | 第109页 |
| 2.4 高温大曲真菌区系α多样性分析 | 第109-111页 |
| 2.5 高温大曲真菌区系组成及β多样性分析 | 第111-117页 |
| 3 结论 | 第117-118页 |
| 第三节 两种高温大曲的蛋白组学初步分析 | 第118-129页 |
| 1 材料与方法 | 第118-129页 |
| 1.1 材料 | 第118-120页 |
| 1.2 方法 | 第120-124页 |
| 1.3 结果与分析 | 第124-127页 |
| 1.4 结论 | 第127-129页 |
| 第四章 两种高温大曲理化指标和风味物质比较分析 | 第129-139页 |
| 1 材料与方法 | 第129-132页 |
| 1.1 材料 | 第129-130页 |
| 1.2 方法 | 第130-132页 |
| 2 结果与分析 | 第132-136页 |
| 2.1 两种高温大曲理化指标分析 | 第132-133页 |
| 2.2 两种高温大曲的风味物质差异 | 第133-136页 |
| 3 结论 | 第136-139页 |
| 第五章 结论与展望 | 第139-143页 |
| 1 结论 | 第139-141页 |
| 2 展望 | 第141-143页 |
| 参考文献 | 第143-149页 |
| 致谢 | 第149-151页 |
| 个人简历 | 第151-154页 |
