| 摘要 | 第4-5页 |
| Abstract | 第5页 |
| 第1章 绪论 | 第8-16页 |
| 1.1 课题来源 | 第8页 |
| 1.2 研究的目的和意义 | 第8-9页 |
| 1.3 白酒发酵微生物研究进展 | 第9-12页 |
| 1.3.1 酒曲简介 | 第9页 |
| 1.3.2 酒醅及窖泥简介 | 第9-10页 |
| 1.3.3 酒曲微生物的研究进展 | 第10-11页 |
| 1.3.4 酒醅中微生物的研究进展 | 第11页 |
| 1.3.5 窖泥中微生物的研究进展 | 第11页 |
| 1.3.6 白酒发酵微生物研究方向 | 第11-12页 |
| 1.4 微生物群落结构分析方法 | 第12-15页 |
| 1.4.1 传统的培养方法 | 第12页 |
| 1.4.2 群落水平生理学指纹方法 (CLPP) | 第12页 |
| 1.4.3 生物标记物方法 | 第12-13页 |
| 1.4.4 以 PCR为基础的现代分子生物学技术 | 第13-15页 |
| 1.5 古井贡酒简介 | 第15页 |
| 1.6 课题主要研究内容 | 第15-16页 |
| 第2章 古井窖泥中微生物的初步鉴定 | 第16-29页 |
| 2.1 引言 | 第16页 |
| 2.2 材料与方法 | 第16-21页 |
| 2.2.1 实验材料与仪器 | 第16-17页 |
| 2.2.2 实验方法 | 第17-21页 |
| 2.3 结果讨论 | 第21-25页 |
| 2.3.1 窖泥DNA的提取 | 第21页 |
| 2.3.2 窖泥中提取的DNA扩增结果 | 第21-22页 |
| 2.3.3 16SrDNA的连接、转化、筛选 | 第22-23页 |
| 2.3.4 克隆测序结果分析与分子鉴定 | 第23-25页 |
| 2.3.5 与古井大曲中的群落构成比较分析 | 第25页 |
| 2.4 本章小结 | 第25-29页 |
| 第3章 PCR增效剂对古井大曲中主要种属区分的影响 | 第29-59页 |
| 3.1 引言 | 第29-30页 |
| 3.2 材料与方法 | 第30-37页 |
| 3.2.1 实验材料与仪器 | 第30-31页 |
| 3.2.2 实验方法 | 第31-37页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第37-58页 |
| 3.3.1 重组质粒的提取结果 | 第37-38页 |
| 3.3.2 引物的筛选结果 | 第38-41页 |
| 3.3.3 QPCR实验结果（未加 PCR 增效剂） | 第41-46页 |
| 3.3.4 QPCR实验结果（添加单一 PCR 增效剂） | 第46-52页 |
| 3.3.5 QPCR实验（添加 PCR 增效剂组合） | 第52-56页 |
| 3.3.6 QPCR实验总结 | 第56页 |
| 3.3.7 增效剂验证实验 | 第56-58页 |
| 3.4 本章小结 | 第58-59页 |
| 第4章 PCR增效剂对不同比例混合模板定量的影响 | 第59-68页 |
| 4.1 引言 | 第59页 |
| 4.2 材料与方法 | 第59-61页 |
| 4.2.1 实验材料 | 第59页 |
| 4.2.2 实验仪器 | 第59页 |
| 4.2.3 实验试剂 | 第59-60页 |
| 4.2.4 实验方法 | 第60-61页 |
| 4.3 结果与分析 | 第61-67页 |
| 4.3.1 未添加PCR增效剂的不同模拟比例混合的模板的扩增结果 | 第61-62页 |
| 4.3.2 不同模拟比例混合的模板的溶解曲线分析 | 第62-64页 |
| 4.3.3 PCR增效剂对不同模拟比例混合模板的影响分析 | 第64-67页 |
| 4.4 本章小结 | 第67-68页 |
| 结论 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-74页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第74-76页 |
| 致谢 | 第76页 |
