| 摘要 | 第4-5页 |
| abstract | 第5-6页 |
| 第1章 引言 | 第12-19页 |
| 1.1 α-L-鼠李糖苷酶 | 第12-14页 |
| 1.1.1 α-L-鼠李糖苷酶概述 | 第12页 |
| 1.1.2 α-L-鼠李糖苷酶的应用 | 第12-14页 |
| 1.2 底物的固定化 | 第14-16页 |
| 1.2.1 大孔吸附树脂概述 | 第14-15页 |
| 1.2.2 大孔吸附树脂固定化底物的原理 | 第15页 |
| 1.2.3 大孔吸附树脂的应用 | 第15-16页 |
| 1.3 固定化酶的研究现状 | 第16-17页 |
| 1.3.1 固定化工艺简介 | 第16页 |
| 1.3.2 固定化方法 | 第16-17页 |
| 1.3.3 固定化α-L-鼠李糖苷酶 | 第17页 |
| 1.4 本文的研究目的、意义及研究内容 | 第17-19页 |
| 1.4.1 前期研究基础 | 第17页 |
| 1.4.2 本论文研究的目的及意义 | 第17-18页 |
| 1.4.3 本论文的研究内容 | 第18-19页 |
| 第2章 柚皮中活性物质提取和分离纯化 | 第19-31页 |
| 2.1 材料与方法 | 第19-22页 |
| 2.1.1 材料和试剂 | 第19页 |
| 2.1.2 主要仪器与设备 | 第19-20页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第20-22页 |
| 2.2 结果与分析 | 第22-30页 |
| 2.2.1 柚皮苷标准曲线的绘制 | 第22-23页 |
| 2.2.2 柠檬苦素标准曲线的绘制 | 第23页 |
| 2.2.3 热水煮提结果 | 第23-24页 |
| 2.2.4 大孔吸附树脂筛选结果 | 第24页 |
| 2.2.5 静态吸附等温模型 | 第24-25页 |
| 2.2.6 静态吸附动力学曲线 | 第25页 |
| 2.2.7 树脂添加量的确定 | 第25-26页 |
| 2.2.8 吸附时间的确定 | 第26-27页 |
| 2.2.9 吸附温度的确定 | 第27页 |
| 2.2.10 振荡速率的确定 | 第27-28页 |
| 2.2.11 动态洗脱及纯化结果 | 第28-30页 |
| 2.3 小结 | 第30-31页 |
| 第3章 α-L-鼠李糖苷酶法水解柚皮苷工艺 | 第31-47页 |
| 3.1 材料与方法 | 第31-35页 |
| 3.1.1 材料和试剂 | 第31页 |
| 3.1.2 主要仪器及设备 | 第31-32页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第32-35页 |
| 3.2 结果与分析 | 第35-46页 |
| 3.2.1 还原糖标准曲线的制作 | 第35页 |
| 3.2.2 助溶剂对柚皮苷酶解过程的影响 | 第35-36页 |
| 3.2.3 加酶量对柚皮苷酶解过程的影响 | 第36页 |
| 3.2.4 底物浓度对柚皮苷酶解过程的影响 | 第36-37页 |
| 3.2.5 pH值对柚皮苷酶解过程的影响 | 第37-38页 |
| 3.2.6 温度对柚皮苷酶解过程的影响 | 第38-39页 |
| 3.2.7 振荡速率对柚皮苷酶解过程的影响 | 第39-40页 |
| 3.2.8 金属离子对柚皮苷酶解过程的影响 | 第40-41页 |
| 3.2.9 不同浓度Mn~(2+)对柚皮苷酶解过程的影响 | 第41页 |
| 3.2.10 不同浓度Fe(2+)对柚皮苷酶解过程的影响 | 第41-42页 |
| 3.2.11 动力学参数的测定及分析 | 第42-43页 |
| 3.2.12 优化工艺验证及1L放大试验 | 第43页 |
| 3.2.13 薄层层析(TLC)检测反应产物的结果分析 | 第43-44页 |
| 3.2.14 HPLC法检测反应产物的结果分析 | 第44-46页 |
| 3.2.15 柚皮苷酶解产物的分离纯化 | 第46页 |
| 3.3 小结 | 第46-47页 |
| 第4章 固定化柚皮苷的酶解转化 | 第47-61页 |
| 4.1 材料与方法 | 第47-49页 |
| 4.1.1 材料和试剂 | 第47页 |
| 4.1.2 主要仪器及设备 | 第47页 |
| 4.1.3 实验方法 | 第47-49页 |
| 4.2 结果与分析 | 第49-60页 |
| 4.2.1 固定化柚皮苷树脂载体的选择 | 第49页 |
| 4.2.2 各树脂载体对柚皮苷吸附量的确定 | 第49-50页 |
| 4.2.3 树脂载体固定化柚皮苷的酶催化反应比较 | 第50-51页 |
| 4.2.4 加酶量对酶解反应的影响 | 第51页 |
| 4.2.5 底物浓度对酶解反应的影响 | 第51-52页 |
| 4.2.6 pH对酶解反应的影响 | 第52-53页 |
| 4.2.7 温度对酶解反应的影响 | 第53-54页 |
| 4.2.8 振荡速率对酶解反应的影响 | 第54页 |
| 4.2.9 不同金属离子对酶解反应的影响 | 第54-55页 |
| 4.2.10 不同浓度Mn~(2+)对酶解反应的影响 | 第55-56页 |
| 4.2.11 不同浓度Fe~(2+)对酶解反应的影响 | 第56页 |
| 4.2.12 酶解反应动力学 | 第56-57页 |
| 4.2.13 最优工艺验证和1L放大试验 | 第57-58页 |
| 4.2.14 薄层层析(TLC)检测反应产物的结果分析 | 第58页 |
| 4.2.15 HPLC法检测反应产物的结果分析 | 第58-60页 |
| 4.2.16 柚皮苷酶解产物的分离纯化 | 第60页 |
| 4.3 小结 | 第60-61页 |
| 第5章 固定化α-L-鼠李糖苷酶的制备及其酶学性质研究 | 第61-74页 |
| 5.1 材料与方法 | 第61-62页 |
| 5.1.1 主要试剂与药品 | 第61页 |
| 5.1.2 主要仪器及设备 | 第61-62页 |
| 5.1.3 实验方法 | 第62页 |
| 5.2 结果与分析 | 第62-73页 |
| 5.2.1 不同质量浓度PVA-海藻酸钠浓度配比对固定化作用的影响 | 第62-63页 |
| 5.2.2 不同戊二醛浓度对固定化作用的影响 | 第63-64页 |
| 5.2.3 不同戊二醛交联时间对固定化作用的影响 | 第64-65页 |
| 5.2.4 酶的吸附时间对固定化作用的影响 | 第65-66页 |
| 5.2.5 不同加酶量对固定化作用的影响 | 第66页 |
| 5.2.6 不同硼酸、CaCl_2组合对固定化作用的影响 | 第66-67页 |
| 5.2.7 不同pH缓冲液对固定化作用的影响 | 第67-68页 |
| 5.2.8 最优条件下制备固定化酶 | 第68-69页 |
| 5.2.9 游离酶与固定化酶的酶学性质 | 第69-73页 |
| 5.3 小结 | 第73-74页 |
| 第6章 结论与展望 | 第74-76页 |
| 6.1 结论 | 第74页 |
| 6.2 展望 | 第74-76页 |
| 致谢 | 第76-77页 |
| 参考文献 | 第77-83页 |
| 在学期间发表的学术论文 | 第83页 |
