| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-7页 |
| 第1章 文献综述 | 第11-21页 |
| 1.1 石榴概况 | 第11页 |
| 1.2 石榴皮多酚概况 | 第11-14页 |
| 1.2.1 石榴皮多酚的药用功效和主要成分 | 第11-13页 |
| 1.2.2 安石榴苷 | 第13页 |
| 1.2.3 石榴鞣花酸 | 第13-14页 |
| 1.3 石榴皮多酚及其主要活性物质的抗肿瘤活性 | 第14-15页 |
| 1.3.1 石榴皮多酚 | 第14页 |
| 1.3.2 安石榴苷 | 第14-15页 |
| 1.3.3 石榴鞣花酸 | 第15页 |
| 1.4 石榴皮多酚及其主要活性物质的抗肿瘤机制 | 第15-17页 |
| 1.4.1 诱导凋亡作用 | 第15-16页 |
| 1.4.2 抑制肿瘤新生血管形成 | 第16页 |
| 1.4.3 抑制肿瘤细胞侵袭 | 第16-17页 |
| 1.4.4 诱导肿瘤细胞分化 | 第17页 |
| 1.4.5 选择性阻断信号转导通路 | 第17页 |
| 1.5 线粒体凋亡通路相关蛋白概述 | 第17-19页 |
| 1.5.1 p53蛋白 | 第18页 |
| 1.5.2 Bcl-2蛋白家族 | 第18页 |
| 1.5.3 PARP | 第18-19页 |
| 1.6 本课题研究目的与意义 | 第19-21页 |
| 第2章 试验材料和方法 | 第21-31页 |
| 2.1 试验材料、试剂和仪器 | 第21-24页 |
| 2.1.1 试验材料 | 第21-22页 |
| 2.1.2 主要试剂 | 第22-23页 |
| 2.1.3 试验仪器 | 第23-24页 |
| 2.2 试验方法 | 第24-31页 |
| 2.2.1 主要试剂配制方法 | 第24-26页 |
| 2.2.2 细胞培养及分组 | 第26-27页 |
| 2.2.3 MTT比色法测定细胞存活率 | 第27页 |
| 2.2.4 Hoechst 33258染色观察HepG2细胞凋亡形态学变化 | 第27-28页 |
| 2.2.5 流式细胞术检测细胞周期分布变化 | 第28页 |
| 2.2.6 Annexin V-FITC/PI双染法检测细胞凋亡 | 第28页 |
| 2.2.7 细胞内Caspase-3和Caspase-9活性检测 | 第28-29页 |
| 2.2.8 细胞内活性氧的测定 | 第29页 |
| 2.2.9 线粒体膜电位△ψm的测定 | 第29页 |
| 2.2.10 细胞内蛋白表达量的测定 | 第29-30页 |
| 2.2.11 数据处理 | 第30-31页 |
| 第3章 结果与讨论 | 第31-49页 |
| 3.1 PPPs诱导人肝癌细胞HepG2凋亡活性及作用机制研究结果 | 第31-41页 |
| 3.1.1 细胞存活率测定结果 | 第31-32页 |
| 3.1.2 细胞形态学变化结果 | 第32页 |
| 3.1.3 细胞周期分布和凋亡率检测结果 | 第32-35页 |
| 3.1.4 细胞内活性氧检测结果 | 第35-37页 |
| 3.1.5 细胞内线粒体膜电位(△ψm)检测结果 | 第37-38页 |
| 3.1.6 Caspase-3和Caspase-9活性检测结果 | 第38页 |
| 3.1.7 Western Blot检测凋亡相关蛋白表达量的结果 | 第38-40页 |
| 3.1.8 小结 | 第40-41页 |
| 3.2 PC、PEA诱导HepG2细胞凋亡活性及作用机制研究结果 | 第41-49页 |
| 3.2.1 细胞存活率测定结果 | 第41-42页 |
| 3.2.2 细胞形态学变化结果 | 第42-43页 |
| 3.2.3 细胞周期分布和凋亡率检测结果 | 第43-46页 |
| 3.2.4 Caspase-3/9活性测定结果 | 第46-47页 |
| 3.2.5 细胞内活性氧水平测定 | 第47-48页 |
| 3.2.6 小结 | 第48-49页 |
| 第4章 结论 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-61页 |
| 致谢 | 第61-63页 |
| 攻读硕士期间研究成果 | 第63页 |
