| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-8页 |
| 0 前言 | 第12-28页 |
| 0.1 卵黄抗体的性质及应用进展 | 第12-16页 |
| 0.1.1 卵黄抗体的结构及性质 | 第12-13页 |
| 0.1.2 卵黄抗体的纯化方法 | 第13-14页 |
| 0.1.3 卵黄抗体应用进展 | 第14-16页 |
| 0.2 卵黄抗体的抑菌作用机理 | 第16-17页 |
| 0.2.1 卵黄抗体对细菌细胞壁的作用 | 第16页 |
| 0.2.2 卵黄抗体对细菌菌毛的作用 | 第16-17页 |
| 0.2.3 卵黄抗体酶解片段发挥的作用 | 第17页 |
| 0.3 蛋白（肽）类生物保鲜剂抑菌作用研究方法 | 第17-20页 |
| 0.3.1 蛋白（肽）类生物保鲜剂抑菌机理研究概述 | 第17-18页 |
| 0.3.2 蛋白（肽）类生物保鲜剂抑菌机理的研究思路 | 第18-20页 |
| 0.4 本研究的目的和意义 | 第20-21页 |
| 0.5 本论文的技术路线 | 第21-22页 |
| 参考文献 | 第22-28页 |
| 1 腐败希瓦氏菌卵黄抗体的制备与纯化 | 第28-36页 |
| 1.1 引言 | 第28页 |
| 1.2 实验材料 | 第28-30页 |
| 1.2.1 卵黄抗体 | 第28-29页 |
| 1.2.2 主要试剂 | 第29页 |
| 1.2.3 主要设备 | 第29页 |
| 1.2.4 缓冲液配制 | 第29-30页 |
| 1.3 实验方法 | 第30-31页 |
| 1.3.1 凝胶柱的制备与平衡 | 第30页 |
| 1.3.2 卵黄抗体的凝胶层析纯化 | 第30页 |
| 1.3.3 SDS-PAGE检测蛋白纯度 | 第30-31页 |
| 1.3.4 间接酶联免疫法（ELISA）检测纯化后卵黄抗体效价 | 第31页 |
| 1.4 实验结果与分析 | 第31-33页 |
| 1.4.1 凝胶层析法对卵黄抗体的纯化结果 | 第31-33页 |
| 1.4.2 纯化卵黄抗体的效价 | 第33页 |
| 1.5 本章小结 | 第33-34页 |
| 参考文献 | 第34-36页 |
| 2 腐败希瓦氏菌卵黄抗体作用靶点及抑菌机制 | 第36-72页 |
| 2.1 引言 | 第36页 |
| 2.2 实验材料 | 第36-38页 |
| 2.2.1 实验菌株 | 第36-37页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第37页 |
| 2.2.3 主要仪器 | 第37-38页 |
| 2.3 实验方法27 | 第38-44页 |
| 2.3.1 腐败希瓦氏菌IgY抑菌活性的测定27 | 第38页 |
| 2.3.2 腐败希瓦氏菌IgY对菌体细胞形态的影响27 | 第38-39页 |
| 2.3.2.1 腐败希瓦氏菌菌体细胞的制备27 | 第38页 |
| 2.3.2.2 扫描电镜观察腐败希瓦氏菌IgY对菌体的作用27 | 第38页 |
| 2.3.2.3 透射电镜观察腐败希瓦氏菌IgY对菌体的作用27 | 第38-39页 |
| 2.3.3 腐败希瓦氏菌IgY对菌体生理指标的影响28 | 第39-40页 |
| 2.3.3.1 腐败希瓦氏菌IgY与菌体相互作用后反应液的收集 | 第39页 |
| 2.3.3.2 腐败希瓦氏菌体疏水性的变化 | 第39页 |
| 2.3.3.3 腐败希瓦氏菌体细胞壁完整性的测定 | 第39页 |
| 2.3.3.4 腐败希瓦氏菌体细胞膜完整性的测定 | 第39-40页 |
| 2.3.4 IgY与腐败希瓦氏菌体相互作用反应液多糖含量的测定 | 第40页 |
| 2.3.5 腐败希瓦氏菌IgY与菌体相互作用产物的制备和纯化 | 第40页 |
| 2.3.6 特征组分的结构分析 | 第40-42页 |
| 2.3.6.1 特征组分银染实验 | 第40-41页 |
| 2.3.6.2 特征组分分子量及单糖组成的测定 | 第41-42页 |
| 2.3.6.3 特征组分脂肪酸组成的测定 | 第42页 |
| 2.3.6.4 特征组分红外光谱测定 | 第42页 |
| 2.3.6.5 特征组分核磁共振光谱测定 | 第42页 |
| 2.3.7 腐败希瓦氏菌IgY与脂多糖结合反应 | 第42-43页 |
| 2.3.8 实验平行设定及数据处理 | 第43-44页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第44-67页 |
| 2.4.1 液体培养基中腐败希瓦氏IgY抑菌活性 | 第44-45页 |
| 2.4.2 IgY对腐败希瓦氏菌细胞形态的影响 | 第45-47页 |
| 2.4.3 腐败希瓦氏菌卵黄抗体对菌体生理指标的影响 | 第47-53页 |
| 2.4.3.1 腐败希瓦氏菌IgY对菌体疏水性的影响 | 第47-48页 |
| 2.4.3.2 腐败希瓦氏菌IgY对菌体细胞壁完整性的影响 | 第48-49页 |
| 2.4.3.3 腐败希瓦氏菌IgY对菌体细胞膜完整性的影响 | 第49-51页 |
| 2.4.3.4 IgY与腐败希瓦氏菌体相互作用反应液多糖含量的测定 | 第51-53页 |
| 2.4.4 腐败希瓦氏菌IgY与菌体相互作用位点的确定 | 第53-62页 |
| 2.4.4.1 特征物质的纯化 | 第53-54页 |
| 2.4.4.2 特征组分的结构分析 | 第54-55页 |
| 2.4.4.3 特征组分分子量及单糖组成的测定结果 | 第55-58页 |
| 2.4.4.4 特征组分脂肪酸组成的测定结果 | 第58-60页 |
| 2.4.4.5 特征组分红外光谱测定结果 | 第60-61页 |
| 2.4.4.6 特征组分核磁共振光谱测定结果 | 第61-62页 |
| 2.4.5 腐败希瓦氏菌IgY与特征物质结合反应 | 第62-63页 |
| 2.4.6 腐败希瓦氏菌IgY抑菌作用方式的推测 | 第63-67页 |
| 2.5 本章小结 | 第67-68页 |
| 参考文献 | 第68-72页 |
| 3 腐败希瓦氏菌卵黄抗体活性片段的制备及抑菌效果评估 | 第72-93页 |
| 3.1 引言 | 第72-73页 |
| 3.2 实验材料 | 第73-74页 |
| 3.2.1 实验菌种及新鲜鱼肉62 | 第73页 |
| 3.2.2 主要试剂 | 第73页 |
| 3.2.3 仪器 | 第73-74页 |
| 3.2.4 溶液配制 | 第74页 |
| 3.3 实验方法 | 第74-78页 |
| 3.3.1 卵黄抗体活性片段的制备条件的摸索 | 第74页 |
| 3.3.1.1 胃蛋白酶酶解IgY | 第74页 |
| 3.3.1.2 高速液相色谱（HPLC）检测酶解反应产物及其变化 | 第74页 |
| 3.3.2 酶解产物的纯化分离及纯度鉴定 | 第74-75页 |
| 3.3.3 活性片段抗原结合能力及液体抑菌效果 | 第75页 |
| 3.3.3.1 活性片段与抗原菌结合能力 | 第75页 |
| 3.3.3.2 活性片段抑菌活性 | 第75页 |
| 3.3.4 活性片段对冷藏大菱鲆样本的保鲜效果 | 第75-77页 |
| 3.3.4.1 冷藏大菱鲆鱼肉的处理 | 第75-76页 |
| 3.3.4.2 细菌总数及主要腐败菌数的测定 | 第76页 |
| 3.3.4.3 挥发性盐基氮（TVB-N值）的测定 | 第76页 |
| 3.3.4.4 感官评定 | 第76-77页 |
| 3.3.4.5 数据处理 | 第77页 |
| 3.3.5 活性片段抑菌作用方式的探讨 | 第77-78页 |
| 3.4 实验结果与分析 | 第78-89页 |
| 3.4.1 不同酶解时间产物的变化 | 第78-80页 |
| 3.4.2 酶解产物的分离及纯度测定 | 第80-81页 |
| 3.4.3 酶解片段的抗原结合能力及液体抑菌效果 | 第81-83页 |
| 3.4.3.1 酶解片段抗原菌结合能力测定结果 | 第81-82页 |
| 3.4.3.2 酶解片段液体抑菌实验结果 | 第82-83页 |
| 3.4.4 酶解片段对冷藏大菱鲆的保鲜效果 | 第83-87页 |
| 3.4.4.1 细菌总数及腐败希瓦氏菌数 | 第83-85页 |
| 3.4.4.2 挥发性盐基氮（TVB-N） | 第85-86页 |
| 3.4.4.3 感官评定结果 | 第86-87页 |
| 3.4.5 酶解片段对于菌体生理指标的影响 | 第87-89页 |
| 3.5 本章小结 | 第89-90页 |
| 参考文献 | 第90-93页 |
| 4 论文总结 | 第93-94页 |
| 5 论文的创新性 | 第94-95页 |
| 6 下一步工作展望 | 第95-96页 |
| 致谢 | 第96-97页 |
| 个人简历 | 第97-98页 |
| 在学期间发表的学术论文 | 第98-99页 |
