| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 1 绪论 | 第8-17页 |
| 1.1 研究目的与意义 | 第8页 |
| 1.2 真菌多糖 | 第8-15页 |
| 1.2.1 真菌多糖的提取分离 | 第8-10页 |
| 1.2.2 真菌多糖的分离纯化 | 第10-11页 |
| 1.2.3 真菌多糖的生理功能 | 第11-13页 |
| 1.2.4 真菌多糖的结构分析 | 第13-14页 |
| 1.2.5 真菌多糖诱导肿瘤细胞凋亡 | 第14-15页 |
| 1.3 黄伞多糖 | 第15-16页 |
| 1.3.1 黄伞多糖的提取分离 | 第15页 |
| 1.3.2 黄伞多糖的分离纯化 | 第15-16页 |
| 1.3.3 黄伞多糖的生理功能 | 第16页 |
| 1.3.4 黄伞多糖的结构分析 | 第16页 |
| 1.4 本实验研究内容 | 第16-17页 |
| 2 黄伞多糖的制备及对肿瘤细胞增殖抑制作用研究 | 第17-30页 |
| 2.1 引言 | 第17页 |
| 2.2 材料与仪器 | 第17-18页 |
| 2.2.1 实验材料 | 第17页 |
| 2.2.2 药品与试剂 | 第17-18页 |
| 2.2.3 仪器与设备 | 第18页 |
| 2.3 实验方法 | 第18-20页 |
| 2.3.1 黄伞多糖的制备 | 第18-19页 |
| 2.3.2 黄伞多糖含量的测定 | 第19页 |
| 2.3.3 黄伞多糖抑制肿瘤细胞增殖的研究 | 第19-20页 |
| 2.4 结果与分析 | 第20-29页 |
| 2.4.1 多糖含量的测定 | 第20-21页 |
| 2.4.2 不同酸碱性的提取溶剂对黄伞多糖得率及纯度的影响 | 第21-22页 |
| 2.4.3 黄伞多糖对人体正常细胞细胞活力的影响 | 第22-26页 |
| 2.4.4 黄伞多糖对抑制人体肿瘤细胞增殖的影响 | 第26-28页 |
| 2.4.5 黄伞多糖红外光谱(IR)分析 | 第28-29页 |
| 2.5 本章小结 | 第29-30页 |
| 3 黄伞多糖的纯化分级及诱导Hela细胞凋亡研究 | 第30-40页 |
| 3.1 引言 | 第30页 |
| 3.2 材料与仪器 | 第30-31页 |
| 3.2.1 实验材料 | 第30页 |
| 3.2.2 药品与试剂 | 第30页 |
| 3.2.3 仪器与设备 | 第30-31页 |
| 3.3 试验方法 | 第31-33页 |
| 3.3.1 细胞培养 | 第31页 |
| 3.3.2 黄伞多糖的纯化分级 | 第31页 |
| 3.3.3 四甲基偶氮唑蓝还原法(MTT)比色法 | 第31-32页 |
| 3.3.4 流式细胞仪检测肿瘤细胞细胞周期 | 第32页 |
| 3.3.5 流式细胞仪检测肿瘤细胞凋亡率 | 第32页 |
| 3.3.6 统计分析 | 第32-33页 |
| 3.4 结果与分析 | 第33-39页 |
| 3.4.1 黄伞多糖的纯化分级 | 第33页 |
| 3.4.2 脱蛋白酸溶性黄伞多糖对人体正常细胞细胞活力的影响 | 第33-35页 |
| 3.4.3 脱蛋白酸溶性黄伞多糖对Hela细胞增殖的抑制作用 | 第35-37页 |
| 3.4.4 SPAP2-1对Hela细胞生长周期的影响 | 第37页 |
| 3.4.5 流式细胞仪检测肿瘤细胞凋亡率 | 第37-39页 |
| 3.5 本章小结 | 第39-40页 |
| 结论 | 第40-41页 |
| 参考文献 | 第41-47页 |
| 附录 | 第47-48页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文 | 第48-49页 |
| 致谢 | 第49-50页 |
