摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
1 绪论 | 第12-19页 |
1.1 山药 | 第12-14页 |
1.1.1 概述 | 第12页 |
1.1.2 分布 | 第12页 |
1.1.3 活性成分 | 第12-13页 |
1.1.4 功能 | 第13-14页 |
1.2 皂苷的研究现状 | 第14-17页 |
1.2.1 皂苷概念 | 第14页 |
1.2.2 皂苷类化合物的结构和分类 | 第14-15页 |
1.2.3 皂苷类化合物的分离纯化方法 | 第15页 |
1.2.4 皂苷类化合物的分析方法 | 第15页 |
1.2.5 皂苷类化合物的理化性质 | 第15-16页 |
1.2.6 甾体皂苷化合物类的生物活性 | 第16-17页 |
1.3 黏液蛋白的研究现状 | 第17-18页 |
1.4 课题研究的目的和意义 | 第18页 |
1.5 本课题研究的主要内容 | 第18-19页 |
2 山药皂苷的提取工艺研究 | 第19-29页 |
2.1 引言 | 第19页 |
2.2 实验仪器与材料 | 第19-20页 |
2.3 实验方法与步骤 | 第20-22页 |
2.3.1 山药皂苷的提取工艺流程 | 第20页 |
2.3.2 山药总皂苷含量的测定方法 | 第20页 |
2.3.3 水浴振荡提取最佳工艺条件的确定 | 第20-21页 |
2.3.4 超声波辅助提取最佳工艺条件的确定 | 第21-22页 |
2.4 实验结果与分析 | 第22-28页 |
2.4.1 山药皂苷含量测定标准曲线的绘制 | 第22-23页 |
2.4.2 水浴振荡提取单因素实验 | 第23-24页 |
2.4.3 水浴振荡法提取正交实验 | 第24-25页 |
2.4.4 水浴振荡提取验证实验 | 第25页 |
2.4.5 超声辅助提取单因素实验 | 第25-27页 |
2.4.6 超声辅助提取正交实验 | 第27-28页 |
2.4.7 超声辅助提取验证实验 | 第28页 |
2.5 本章小结 | 第28-29页 |
3 山药总皂苷的纯化工艺研究 | 第29-38页 |
3.1 引言 | 第29页 |
3.2 实验仪器与材料 | 第29-30页 |
3.3 实验方法与步骤 | 第30-32页 |
3.3.1 山药皂苷含量的测定 | 第30页 |
3.3.2 大孔吸附树脂法纯化山药皂苷粗提物 | 第30-32页 |
3.4 实验结果与分析 | 第32-37页 |
3.4.1 静态吸附与解吸筛选大孔吸附树脂 | 第32-33页 |
3.4.2 动态吸附及解吸的最佳条件 | 第33-37页 |
3.5 本章小结 | 第37-38页 |
4 山药皂苷的组分分析 | 第38-45页 |
4.1 引言 | 第38页 |
4.2 实验仪器与材料 | 第38页 |
4.3 实验方法 | 第38-39页 |
4.3.1 山药皂苷的分析检测 | 第38-39页 |
4.3.2 山药皂苷的HPLC- ESI/MS分析 | 第39页 |
4.4 实验结果与分析 | 第39-44页 |
4.4.1 山药皂苷的定性分析 | 第39-41页 |
4.4.2 山药皂苷的HPLC- ESI/MS结果分析 | 第41-44页 |
4.5 本章小结 | 第44-45页 |
5 山药总皂苷降糖降脂作用的研究 | 第45-53页 |
5.1 引言 | 第45页 |
5.2 主要仪器与材料 | 第45-46页 |
5.3 实验方法与步骤 | 第46-48页 |
5.3.1 四氧嘧啶性糖尿病小鼠模型的制备 | 第46页 |
5.3.2 动物分组及处理 | 第46页 |
5.3.3 血糖含量的测定 | 第46-47页 |
5.3.4 血清中超氧化物歧化酶(SOD)活力的测定 | 第47页 |
5.3.5 血清中甘油三酯含量的测定 | 第47-48页 |
5.3.6 血清中总胆固醇含量的测定 | 第48页 |
5.3.7 数据处理及结果判定 | 第48页 |
5.4 结果与分析 | 第48-52页 |
5.4.1 山药总皂苷对四氧嘧啶型糖尿病小鼠血糖的影响 | 第48-49页 |
5.4.2 山药总皂苷对四氧嘧啶型糖尿病小鼠抗氧化能力的影响 | 第49-50页 |
5.4.3 山药总皂苷对四氧嘧啶型糖尿病小鼠甘油三酯的影响 | 第50-51页 |
5.4.4 山药总皂苷对四氧嘧啶型糖尿病小鼠总胆固醇的影响 | 第51-52页 |
5.5 本章小结 | 第52-53页 |
6 山药黏液蛋白的提取与分离 | 第53-62页 |
6.1 引言 | 第53页 |
6.2 主要实验仪器与材料 | 第53页 |
6.3 实验方法与步骤 | 第53-56页 |
6.3.1 山药黏液蛋白的提取工艺流程 | 第53-54页 |
6.3.2 山药黏液蛋白的检测方法 | 第54-55页 |
6.3.3 超声波辅助提取山药黏液蛋白最佳工艺条件的确定 | 第55-56页 |
6.4 实验结果与分析 | 第56-61页 |
6.4.1 葡萄糖标准曲线的绘制 | 第56页 |
6.4.2 蛋白质标准曲线的绘制 | 第56-57页 |
6.4.3 超声波辅助提取黏液蛋白最佳工艺条件 | 第57-60页 |
6.4.4 山药黏液蛋白的分离 | 第60-61页 |
6.4.5 山药黏液蛋白的含量 | 第61页 |
6.5 本章小结 | 第61-62页 |
7 山药黏液蛋白体外清除自由基研究 | 第62-66页 |
7.1 前言 | 第62页 |
7.2 实验仪器与材料 | 第62页 |
7.3 实验方法与步骤 | 第62-64页 |
7.3.1 山药黏液蛋白清除羟自由基能力的测定 | 第62-63页 |
7.3.2 山药黏液蛋白清除超氧阴离子自由基能力的测定 | 第63页 |
7.3.3 山药黏液蛋白还原能力的测定 | 第63-64页 |
7.4 实验结果与分析 | 第64-65页 |
7.4.1 山药黏液蛋白清除羟自由基能力的测定 | 第64页 |
7.4.2 山药黏液蛋白清除超氧阴离子自由基能力的测定 | 第64-65页 |
7.4.3 山药黏液蛋白还原能力的测定 | 第65页 |
7.5 本章小结 | 第65-66页 |
结论 | 第66-68页 |
参考文献 | 第68-72页 |
附录 | 第72-73页 |
攻读学位期间发表的学术论文 | 第73-74页 |
致谢 | 第74页 |