| 摘要 | 第5-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 0 绪论 | 第17-34页 |
| 0.1 黄酒概述 | 第17-20页 |
| 0.1.1 黄酒的历史文化 | 第17-18页 |
| 0.1.2 黄酒的研究现状 | 第18-19页 |
| 0.1.2.1 氨基酸 | 第18页 |
| 0.1.2.2 生物活性肽 | 第18-19页 |
| 0.1.2.3 碳水化合物 | 第19页 |
| 0.1.2.4 矿质元素 | 第19页 |
| 0.1.2.5 酚类物质以及抗氧化活性的研究 | 第19页 |
| 0.1.3 黄酒的发展概况 | 第19-20页 |
| 0.2 牡蛎营养价值概述 | 第20-22页 |
| 0.2.1 牛磺酸 | 第21页 |
| 0.2.2 牡蛎多糖 | 第21-22页 |
| 0.2.3 牡蛎多肽 | 第22页 |
| 0.2.4 牡蛎产品的开发现状 | 第22页 |
| 0.3 脲酶概述 | 第22-27页 |
| 0.3.1 脲酶的生物学分类 | 第23页 |
| 0.3.2 氨基甲酸乙酯概述 | 第23-24页 |
| 0.3.3 黄酒中 EC 形成机理 | 第24页 |
| 0.3.4 | 第24页 |
| 0.3.4.1 氨甲酰磷酸和乙醇反应 | 第24页 |
| 0.3.4.2 尿素和乙醇反应 | 第24页 |
| 0.3.4.3 瓜氨酸和乙醇反应 | 第24页 |
| 0.3.5 生产工艺的影响 | 第24-25页 |
| 0.3.5.1 原料 | 第25页 |
| 0.3.5.2 煎酒 | 第25页 |
| 0.3.5.3 储酒 | 第25页 |
| 0.3.6 控制 EC 的方法 | 第25-26页 |
| 0.3.6.1 选用优良的菌株 | 第25页 |
| 0.3.6.2 控制发酵条件 | 第25-26页 |
| 0.3.6.3 添加酸性脲酶 | 第26页 |
| 0.3.7 国外研究进展 | 第26-27页 |
| 0.3.8 国内研究进展 | 第27页 |
| 0.4 本论文的主要研究内容、目的和意义 | 第27-29页 |
| 参考文献 | 第29-34页 |
| 1 即墨老酒功能性成分分析和抗氧化活性研究 | 第34-53页 |
| 引言 | 第34-35页 |
| 1.1 材料与仪器 | 第35-36页 |
| 1.1.1 材料 | 第35页 |
| 1.1.2 试剂 | 第35-36页 |
| 1.1.3 装置与仪器 | 第36页 |
| 1.2 方法 | 第36-42页 |
| 1.2.1 游离氨基酸 | 第36-37页 |
| 1.2.1.1 配制茚三酮溶液 | 第36页 |
| 1.2.1.2 制备氨基酸标准溶液 | 第36页 |
| 1.2.1.3 样品前处理 | 第36-37页 |
| 1.2.1.4 色谱条件 | 第37页 |
| 1.2.2 功能性低聚糖 | 第37-39页 |
| 1.2.2.1 配制标准溶液 | 第37页 |
| 1.2.2.2 样品的前处理 | 第37-39页 |
| 1.2.2.3 色谱条件 | 第39页 |
| 1.2.3 矿质元素测定 | 第39页 |
| 1.2.4 即墨老酒中多酚含量和抗氧化性研究 | 第39-42页 |
| 1.2.4.1 多酚含量 | 第39-41页 |
| 1.2.4.2 DPPH 自由基清除能力 | 第41-42页 |
| 1.2.4.3 还原力 | 第42页 |
| 1.3 结果与讨论 | 第42-49页 |
| 1.3.1 游离氨基酸 | 第42-45页 |
| 1.3.1.1 氨基酸标准品谱图 | 第43页 |
| 1.3.1.2 样品游离氨基酸 | 第43-45页 |
| 1.3.2 低聚糖 | 第45-46页 |
| 1.3.2.1 四种低聚糖标准品谱图 | 第45-46页 |
| 1.3.2.2 样品的低聚糖 | 第46页 |
| 1.3.3 矿质元素 | 第46-47页 |
| 1.3.4 多酚含量和抗氧化活性 | 第47-49页 |
| 1.3.4.1 多酚含量 | 第47-48页 |
| 1.3.4.2 DPPH 自由基清除能力 | 第48页 |
| 1.3.4.3 还原力 | 第48-49页 |
| 1.4 本章小结 | 第49-51页 |
| 参考文献 | 第51-53页 |
| 2 牡蛎黄酒的研制 | 第53-66页 |
| 引言 | 第53-54页 |
| 2.1 材料与仪器 | 第54页 |
| 2.1.1 材料 | 第54页 |
| 2.1.2 仪器 | 第54页 |
| 2.2 实验方法 | 第54-58页 |
| 2.2.1 工艺的建立 | 第54-55页 |
| 2.2.1.1 最佳蛋白酶的选择 | 第54-55页 |
| 2.2.1.2 酶解条件优化 | 第55页 |
| 2.2.1.3 牡蛎酶解液黄酒和匀浆液黄酒 | 第55页 |
| 2.2.1.4 牡蛎黄酒和对照黄酒 | 第55页 |
| 2.2.2 水解度的测定 | 第55-57页 |
| 2.2.2.1 总蛋白的测定 | 第56页 |
| 2.2.2.2 可溶性蛋白的测定 | 第56-57页 |
| 2.2.3 多糖含量 | 第57-58页 |
| 2.2.4 牛磺酸 | 第58页 |
| 2.2.5 游离氨基酸 | 第58页 |
| 2.2.6 多酚含量 | 第58页 |
| 2.2.7 清除 DPPH 自由基能力实验 | 第58页 |
| 2.3 结果与分析 | 第58-64页 |
| 2.3.1 建立的牡蛎黄酒生产工艺 | 第58-61页 |
| 2.3.1.1 最佳蛋白酶的选择 | 第58-60页 |
| 2.3.1.2 酶解工艺的建立 | 第60-61页 |
| 2.3.2 牡蛎酶解液黄酒和匀浆液黄酒酿造和营养成分分析 | 第61-63页 |
| 2.3.2.1 基本理化指标 | 第61页 |
| 2.3.2.2 游离氨基酸 | 第61页 |
| 2.3.2.3 多酚含量 | 第61-62页 |
| 2.3.2.4 清除 DPPH 自由基能力的比较 | 第62-63页 |
| 2.3.3 牡蛎黄酒和对照黄酒的基本理化指标分析 | 第63-64页 |
| 2.3.3.1 两种黄酒基本理化指标分析 | 第63-64页 |
| 2.4 本章小结 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-66页 |
| 3 海洋保健黄酒的成分分析和抗氧化活性研究 | 第66-74页 |
| 引言 | 第66页 |
| 3.1 材料 | 第66页 |
| 3.2 实验方法 | 第66页 |
| 3.2.1 游离氨基酸 | 第66页 |
| 3.2.2 多酚含量 | 第66页 |
| 3.2.3 矿质元素 | 第66页 |
| 3.2.4 抗氧化性能分析 | 第66页 |
| 3.2.4.1 DPPH 自由基清除能力 | 第66页 |
| 3.2.4.2 还原力 | 第66页 |
| 3.3 结果与分析 | 第66-72页 |
| 3.3.1 游离氨基酸 | 第66-67页 |
| 3.3.1.1 常见氨基酸 | 第66-67页 |
| 3.3.1.2 非蛋白质氨基酸 | 第67页 |
| 3.3.2 多酚含量 | 第67页 |
| 3.3.3 矿质元素 | 第67-70页 |
| 3.3.4 抗氧化活性 | 第70-72页 |
| 3.3.4.1 DPPH 自由基清除能力 | 第70-71页 |
| 3.3.4.2 还原力 | 第71-72页 |
| 3.4 本章小结 | 第72-73页 |
| 参考文献 | 第73-74页 |
| 4 产酸性脲酶微生物的筛选鉴定 | 第74-89页 |
| 引言 | 第74页 |
| 4.1 材料、试剂与仪器 | 第74-76页 |
| 4.1.1 筛菌样品 | 第74-75页 |
| 4.1.2 培养基 | 第75页 |
| 4.1.3 试剂 | 第75-76页 |
| 4.1.4 实验仪器 | 第76页 |
| 4.2 实验方法与步骤 | 第76-81页 |
| 4.2.1 菌株筛选与保藏 | 第76-77页 |
| 4.2.2 发酵鉴定产酸性脲酶能力 | 第77-78页 |
| 4.2.2.1 酶活定义 | 第77页 |
| 4.2.2.2 酶活力测定 | 第77-78页 |
| 4.2.3 菌株形态学鉴定及 16S rRNA 鉴定的方法 | 第78-79页 |
| 4.2.3.1 革兰氏染色 | 第78页 |
| 4.2.3.2 16S rRNA 基因鉴定 | 第78-79页 |
| 4.2.4 菌株 OAU-1 发酵特性的研究 | 第79-80页 |
| 4.2.4.1 静置与摇床培养的方法 | 第79页 |
| 4.2.4.2 添加诱导剂的影响 | 第79页 |
| 4.2.4.3 菌体生长密度及产酶时间曲线研究 | 第79-80页 |
| 4.2.4.4 酸性脲酶在菌株 OAU-1 细胞中存在部位的检测 | 第80页 |
| 4.2.5 酸性脲酶的最适反应条件及稳定性研究 | 第80页 |
| 4.2.5.1 最适反应 pH 值 | 第80页 |
| 4.2.5.2 最适反应温度 | 第80页 |
| 4.2.5.3 pH 稳定性 | 第80页 |
| 4.2.5.4 温度稳定性 | 第80页 |
| 4.2.6 酸性脲酶在黄酒中清除尿素的研究 | 第80-81页 |
| 4.2.6.1 尿素测定方法 | 第80-81页 |
| 4.2.6.2 酸性脲酶清除尿素 | 第81页 |
| 4.3 实验结果与讨论 | 第81-86页 |
| 4.3.1 筛选产酸性脲酶微生物 OAU-1 菌株的鉴定 | 第81-82页 |
| 4.3.1.1 形态观察 | 第81-82页 |
| 4.3.1.2 16S rRNA 结果分析 | 第82页 |
| 4.3.2 发酵特性结果分析 | 第82-84页 |
| 4.3.2.1 静置与摇床培养发现 | 第82页 |
| 4.3.2.2 添加诱导剂对产酶的影响 | 第82-83页 |
| 4.3.2.3 酸性脲酶在细胞中存在部位 | 第83-84页 |
| 4.3.2.4 微生物生长密度时间曲线和产酶时间曲线 | 第84页 |
| 4.3.3 酸性脲酶的最适反应条件及稳定性研究 | 第84-86页 |
| 4.3.3.1 最适反应 pH 值和温度 | 第85页 |
| 4.3.3.2 保存 pH 和温度稳定性 | 第85-86页 |
| 4.3.4 酸性脲酶在黄酒中清除尿素的研究结果 | 第86页 |
| 4.4 本章小结 | 第86-88页 |
| 参考文献 | 第88-89页 |
| 5 总结与展望 | 第89-91页 |
| 5.1 主要结论 | 第89-90页 |
| 5.2 展望 | 第90-91页 |
| 附录一 菌株 OAU-1 的 16SrRNA 基因测序结果 | 第91-92页 |
| 附录二 本论文研制的进入市场销售的牡蛎黄酒 | 第92-93页 |
| 致谢 | 第93-94页 |
| 个人简历 | 第94页 |
| 取得的学术成果 | 第94-95页 |
