| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 第1章 绪论 | 第14-30页 |
| 1.1 农药残留的毒性作用机制 | 第14-15页 |
| 1.2 甲萘威对非靶标生物的毒性作用机制 | 第15-19页 |
| 1.2.1 甲萘威对原核生物的毒性 | 第16页 |
| 1.2.2 甲萘威对真核生物的毒性 | 第16-19页 |
| 1.3 抗氧化食品对甲萘威损伤细胞的保护作用 | 第19-27页 |
| 1.3.1 抗氧化食品及抗氧化物 | 第19-20页 |
| 1.3.2 抗氧化物的神经保护作用 | 第20页 |
| 1.3.3 大豆异黄酮对神经细胞的保护作用 | 第20-27页 |
| 1.4 论文框架及技术路线 | 第27-30页 |
| 1.4.1 论文框架 | 第27-28页 |
| 1.4.2 技术路线图 | 第28-30页 |
| 第2章 外源诱导损伤PC12细胞模型的建立 | 第30-46页 |
| 2.1 材料与方法 | 第30-33页 |
| 2.1.1 仪器与试剂 | 第30-31页 |
| 2.1.2 试剂配制方法 | 第31页 |
| 2.1.3 PC12细胞培养方法 | 第31页 |
| 2.1.4 PC12细胞形态观察方法 | 第31页 |
| 2.1.5 PC12细胞存活率测定方法 | 第31-32页 |
| 2.1.6 乳酸脱氢酶（LDH）含量测定方法 | 第32-33页 |
| 2.1.7 数据统计与分析 | 第33页 |
| 2.2 结果与分析 | 第33-41页 |
| 2.2.1 外源诱导处理对PC12细胞形态的影响 | 第33-36页 |
| 2.2.2 外源诱导处理对PC12细胞存活率的影响 | 第36-40页 |
| 2.2.3 外源诱导处理对PC12细胞LDH含量的影响 | 第40-41页 |
| 2.3 讨论 | 第41-45页 |
| 2.3.1 神经细胞模型 | 第41-42页 |
| 2.3.2 PC12细胞培养方法及传代周期 | 第42页 |
| 2.3.3 溶剂选择 | 第42-43页 |
| 2.3.4 细胞活力测定方法 | 第43页 |
| 2.3.5 甲萘威和异丙威对PC12细胞的影响 | 第43-44页 |
| 2.3.6 抗氧化物对PC12细胞的影响 | 第44-45页 |
| 2.4 本章小结 | 第45-46页 |
| 第3章 SIF对甲萘威诱导损伤的PC12细胞毒性的影响 | 第46-66页 |
| 3.1 材料与方法 | 第46-49页 |
| 3.1.1 仪器与试剂 | 第46页 |
| 3.1.2 PC12细胞培养及传代方法 | 第46页 |
| 3.1.3 SIF对甲萘威诱导损伤的细胞测定方法 | 第46-49页 |
| 3.1.4 数据统计与分析 | 第49页 |
| 3.2 结果与分析 | 第49-62页 |
| 3.2.1 SIF对甲萘威诱导损伤的PC12细胞存活率的影响 | 第49-51页 |
| 3.2.2 SIF对甲萘威溶液诱导的PC12细胞形态的影响 | 第51-53页 |
| 3.2.3 SIF对甲萘威诱导损伤的PC12细胞LDH含量的影响 | 第53-55页 |
| 3.2.4 SIF对甲萘威诱导损伤的PC12细胞MMP的影响 | 第55-60页 |
| 3.2.5 PC12细胞中Caspase-3 活性的测定 | 第60-62页 |
| 3.3 讨论 | 第62-65页 |
| 3.4 本章小结 | 第65-66页 |
| 第4章 SIF对甲萘威诱导损伤PC12细胞神经递质的影响 | 第66-74页 |
| 4.1 材料与方法 | 第66-67页 |
| 4.1.1 仪器与试剂 | 第66页 |
| 4.1.2 PC12细胞培养液ACh含量测定 | 第66页 |
| 4.1.3 数据统计与分析 | 第66-67页 |
| 4.2 结果与分析 | 第67-70页 |
| 4.2.1 甲萘威对ACh含量的影响 | 第67-68页 |
| 4.2.2 SIF对ACh含量的影响 | 第68-69页 |
| 4.2.3 SIF对甲萘威诱导损伤的PC12细胞培养液中ACh含量的影响 | 第69-70页 |
| 4.3 讨论 | 第70-73页 |
| 4.4 本章小结 | 第73-74页 |
| 第5章 SIF对PC12细胞抗氧化系统的作用 | 第74-86页 |
| 5.1 材料与方法 | 第74-76页 |
| 5.1.1 仪器与试剂 | 第74页 |
| 5.1.2 PC12细胞培养方法和试剂配制方法 | 第74-75页 |
| 5.1.3 PC12细胞MDA含量测定方法 | 第75页 |
| 5.1.4 PC12细胞SOD比活力及抑制率测定方法 | 第75页 |
| 5.1.5 PC12细胞GSH含量测定方法 | 第75页 |
| 5.1.6 PC12细胞内RFI测定方法 | 第75-76页 |
| 5.1.7 数据统计与分析 | 第76页 |
| 5.2 结果与分析 | 第76-81页 |
| 5.2.1 PC12细胞MDA含量 | 第76-77页 |
| 5.2.2 PC12细胞SOD比活力及抑制率 | 第77-78页 |
| 5.2.3 PC12细胞GSH含量 | 第78-79页 |
| 5.2.4 PC12细胞RFI | 第79-81页 |
| 5.3 讨论 | 第81-83页 |
| 5.4 本章小结 | 第83-86页 |
| 第6章 SIF对甲萘威诱导损伤PC12细胞抗氧化系统的影响 | 第86-102页 |
| 6.1 材料与方法 | 第86页 |
| 6.2 结果与分析 | 第86-96页 |
| 6.2.1 PC12细胞中MDA含量 | 第86-88页 |
| 6.2.2 PC12细胞SOD比活力及抑制率 | 第88-91页 |
| 6.2.3 PC12细胞GSH含量 | 第91-93页 |
| 6.2.4 PC12细胞RFI | 第93-96页 |
| 6.3 讨论 | 第96-99页 |
| 6.4 本章小结 | 第99-102页 |
| 第7章 全文结论 | 第102-108页 |
| 7.1 全文结论 | 第102-103页 |
| 7.2 总讨论 | 第103-106页 |
| 7.2.1 暴露于低浓度甲萘威的危害 | 第103-104页 |
| 7.2.2 SIF的食用安全性 | 第104页 |
| 7.2.3 SIF抗氧化活性的构效关系 | 第104-105页 |
| 7.2.4 SIF对其它基于AChE和AChR作用的神经毒剂农药可能的拮抗作用 | 第105页 |
| 7.2.5 SIF功能食品未来发展趋势 | 第105-106页 |
| 7.3 有待深入研究的问题 | 第106-108页 |
| 参考文献 | 第108-132页 |
| 作者简介及科研成果 | 第132-134页 |
| 致谢 | 第134页 |
