| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-8页 |
| 英文缩写词表 | 第9-15页 |
| 第1章 绪论 | 第15-35页 |
| 1.1 人参及人参皂苷的研究概况 | 第15-24页 |
| 1.1.1 人参的分类和化学组成 | 第15-16页 |
| 1.1.2 人参皂苷及其结构与分类 | 第16-18页 |
| 1.1.3 人参皂苷的代谢 | 第18-21页 |
| 1.1.4 人参皂苷的提取技术 | 第21-23页 |
| 1.1.5 人参皂苷的分析技术 | 第23-24页 |
| 1.2 人参皂苷抑制氧化应激损伤和抗凋亡作用研究进展 | 第24-28页 |
| 1.2.1 氧化应激的产生及机制 | 第24-25页 |
| 1.2.2 细胞凋亡的产生及机制 | 第25-26页 |
| 1.2.3 人参皂苷抑制氧化应激研究进展 | 第26-27页 |
| 1.2.4 人参皂苷抗凋亡研究进展 | 第27-28页 |
| 1.3 协同抑制氧化应激研究进展 | 第28-30页 |
| 1.3.1 人参皂苷协同作用研究进展 | 第28页 |
| 1.3.2 抗氧化肽协同作用研究进展 | 第28-29页 |
| 1.3.3 Trolox协同作用研究进展 | 第29页 |
| 1.3.4 花青素协同作用研究进展 | 第29-30页 |
| 1.4 本论文研究内容 | 第30-35页 |
| 1.4.1 研究目的与意义 | 第30-31页 |
| 1.4.2 研究内容 | 第31-33页 |
| 1.4.3 技术路线 | 第33-35页 |
| 第2章 人参皂苷的提取及对抗氧化活性的影响 | 第35-69页 |
| 2.1 材料与设备 | 第36-38页 |
| 2.2 试验方法 | 第38-44页 |
| 2.2.1 人参皂苷提取方法 | 第38-40页 |
| 2.2.2 纯化和检测方法 | 第40-41页 |
| 2.2.3 化学抗氧化评价方法 | 第41-42页 |
| 2.2.4 体外细胞抑制氧化应激评价方法 | 第42-44页 |
| 2.2.5 数据分析 | 第44页 |
| 2.3 结果与讨论 | 第44-66页 |
| 2.3.1 PEF提取对人参皂苷得率的影响 | 第44-51页 |
| 2.3.2 PEF和SCSE提取的人参皂苷的自由基清除能力 | 第51-54页 |
| 2.3.3 H_2O_2诱导的HEK-293细胞氧化应激模型的建立 | 第54-55页 |
| 2.3.4 PEF和SCSE提取的人参皂苷对H_2O_2诱导的细胞氧化应激损伤的抑制作用 | 第55-62页 |
| 2.3.5 PEF和SCSE提取的人参皂苷的细胞抗氧化活性（CAA） | 第62-64页 |
| 2.3.6 对比分析PEF和SCSE提取物中7种皂苷单体含量变化 | 第64-66页 |
| 2.4 本章小结 | 第66-69页 |
| 第3章 筛选具有抑制氧化应激作用的人参皂苷及其协同组合 | 第69-91页 |
| 3.1 材料与设备 | 第70页 |
| 3.2 试验方法 | 第70-72页 |
| 3.2.1 DPPH清除率检测 | 第70页 |
| 3.2.2 ORAC检测 | 第70-71页 |
| 3.2.3 人参皂苷单体毒性/增殖试验 | 第71页 |
| 3.2.4 人参皂苷单体保护试验 | 第71页 |
| 3.2.5 协同毒性/增殖试验 | 第71页 |
| 3.2.6 协同保护试验 | 第71页 |
| 3.2.7 数据分析 | 第71-72页 |
| 3.3 结果与讨论 | 第72-88页 |
| 3.3.1 十四种人参皂苷的DPPH清除能力 | 第72-74页 |
| 3.3.2 十四种人参皂苷的ORAC能力 | 第74-77页 |
| 3.3.3 十四种人参皂苷对HEK-293细胞的毒性作用 | 第77-79页 |
| 3.3.4 十四种人参皂苷对HEK-293细胞的保护作用 | 第79-83页 |
| 3.3.5 F2与多肽、Trolox、C3G联合处理对HEK-293细胞的毒性作用 | 第83-84页 |
| 3.3.6 F2与WNWAD对H_2O_2诱导的细胞氧化损伤的保护作用 | 第84-85页 |
| 3.3.7 F2与WLKFI对H_2O_2诱导的细胞氧化损伤的保护作用 | 第85-86页 |
| 3.3.8 F2与Trolox对H_2O_2诱导的细胞氧化损伤的保护作用 | 第86-87页 |
| 3.3.9 F2与C3G对H_2O_2诱导的细胞氧化损伤的保护作用 | 第87-88页 |
| 3.4 本章小结 | 第88-91页 |
| 第4章 人参皂苷F2与C3G协同抑制HEK-293细胞氧化应激机制 | 第91-111页 |
| 4.1 材料与设备 | 第92-93页 |
| 4.2 试验方法 | 第93-97页 |
| 4.2.1 细胞ROS测定 | 第93页 |
| 4.2.2 细胞MDA水平和抗氧化酶类（CAT、SOD、GSH-Px）活性测定 | 第93-94页 |
| 4.2.3 Western Blot | 第94-96页 |
| 4.2.4 qRT-PCR | 第96-97页 |
| 4.2.5 数据分析 | 第97页 |
| 4.3 结果与讨论 | 第97-109页 |
| 4.3.1 F2与C3G对细胞内ROS的协同抑制作用 | 第97-100页 |
| 4.3.2 F2和C3G协同对HEK-293细胞MDA水平的影响 | 第100-101页 |
| 4.3.3 F2和C3G协同对HEK-293细胞抗氧化酶系的影响 | 第101-105页 |
| 4.3.4 F2和C3G协同对Nrf2蛋白表达和mRNA表达的影响 | 第105-107页 |
| 4.3.5 F2和C3G协同对Keap1蛋白表达和m RNA表达的影响 | 第107-109页 |
| 4.4 本章小结 | 第109-111页 |
| 第5章 人参皂苷F2与C3G协同抑制HEK-293细胞凋亡机制 | 第111-127页 |
| 5.1 材料与设备 | 第111-112页 |
| 5.2 试验方法 | 第112-114页 |
| 5.2.1 细胞乳酸脱氢酶LDH释放率测定 | 第112页 |
| 5.2.2 线粒体膜电位（MMP）测定 | 第112-113页 |
| 5.2.3 细胞Caspase-6 和Caspase-9 活性测定 | 第113页 |
| 5.2.4 Western blot | 第113页 |
| 5.2.5 qRT-PCR | 第113页 |
| 5.2.6 数据分析 | 第113-114页 |
| 5.3 结果与讨论 | 第114-126页 |
| 5.3.1 F2与C3G协同对HEK-293细胞LDH释放的影响 | 第114-115页 |
| 5.3.2 F2与C3G协同HEK-293细胞线粒体膜电位变化的影响 | 第115-118页 |
| 5.3.3 F2和C3G协同对Caspase-6 和Caspase-9 活性的影响 | 第118-120页 |
| 5.3.4 F2和C3G协同对凋亡相关蛋白表达水平的影响 | 第120-123页 |
| 5.3.5 F2与C3G协同对NF-κB p65蛋白表达和mRNA表达的影响 | 第123-126页 |
| 5.4 本章小结 | 第126-127页 |
| 第6章 结论 | 第127-131页 |
| 6.1 全文结论 | 第127-129页 |
| 6.2 创新性 | 第129-131页 |
| 参考文献 | 第131-149页 |
| 导师简介 | 第149-151页 |
| 作者简介 | 第151-153页 |
| 攻读博士学位期间所取得的科研成果 | 第153-155页 |
| 致谢 | 第155页 |
