| 中文摘要 | 第1-10页 |
| ABSTRACT | 第10-12页 |
| 1 引言 | 第12-31页 |
| ·一氧化氮 | 第12-16页 |
| ·NO 在植物体内的产生 | 第12-15页 |
| ·依赖于一氧化氮合成酶（NOS）的生成途径 | 第13-14页 |
| ·依赖于硝酸还原酶(NR)的生成途径 | 第14页 |
| ·非酶促的NO 生成途径 | 第14-15页 |
| ·NO 在植物体内的调节作用 | 第15-16页 |
| ·NO 介导脱落素诱导的气孔关闭 | 第15页 |
| ·NO 与抗氧化酶的关系 | 第15页 |
| ·NO 和乙烯的相互作用 | 第15-16页 |
| ·乙烯 | 第16-25页 |
| ·乙烯的生物合成 | 第17页 |
| ·乙烯的生理效应 | 第17-18页 |
| ·乙烯信号转导 | 第18-23页 |
| ·乙烯反应突变体 | 第18-20页 |
| ·乙烯信号转导模型 | 第20页 |
| ·乙烯转导途径中各个因子的上下关系 | 第20-23页 |
| ·乙烯受体的研究现状 | 第23-25页 |
| ·乙烯受体家族 | 第23-24页 |
| ·乙烯受体蛋白 | 第24-25页 |
| ·线粒体 | 第25-28页 |
| ·线粒体结构特点与功能 | 第26页 |
| ·线粒体通透性转变孔 | 第26-28页 |
| ·细胞色素c-凋亡起始因子 | 第28-29页 |
| ·论文研究内容及意义 | 第29-31页 |
| 2 材料与方法 | 第31-43页 |
| ·试材与试材处理 | 第31-32页 |
| ·仪器与试剂 | 第32-35页 |
| ·试验方法 | 第35-43页 |
| ·乙烯受体蛋白的原核表达及NO 对乙烯受体基因的影响 | 第35-40页 |
| ·特异性引物设计 | 第35页 |
| ·RNA 提取 | 第35页 |
| ·总浓度测定 | 第35页 |
| ·cDNA 第一链的合成 | 第35-36页 |
| ·梯度PCR | 第36页 |
| ·回收目的DNA 片段 | 第36-37页 |
| ·克隆载体的构建及鉴定 | 第37-39页 |
| ·原核表达载体构建及鉴定 | 第39页 |
| ·目的基因的诱导表达条件的优化及可溶性分析 | 第39页 |
| ·含重组质粒的大肠杆菌的繁殖培养 | 第39页 |
| ·大肠杆菌的破碎和目的蛋白的获得 | 第39-40页 |
| ·ETR1 蛋白的组氨酸激酶活性 | 第40页 |
| ·NO 乙烯受体基因的扩增的影响 | 第40页 |
| ·一氧化氮对采后李果实线粒体膜氧化损伤的影响 | 第40-43页 |
| ·果实呼吸速率 | 第40页 |
| ·超氧自由基和氢过氧化物含量的测定 | 第40页 |
| ·抗氧化酶活性测定 | 第40-41页 |
| ·线粒体的提取和活性测定 | 第41页 |
| ·线粒体膜通透性转换孔（MPTP）的测定 | 第41页 |
| ·细胞色素Cyt c/a 测定 | 第41页 |
| ·线粒体膜流动性检测 | 第41-42页 |
| ·线粒体膜电位的测定 | 第42-43页 |
| 3 结果与分析 | 第43-56页 |
| ·乙烯受体的纯化与NO 对乙烯受体基因转录的影响 | 第43-50页 |
| ·桃果实RNA 的完整性 | 第43页 |
| ·RT-PCR | 第43-44页 |
| ·ETR1 基因的扩增 | 第44-45页 |
| ·ETR1 基因的扩增及原核表达载体的构建 | 第45-46页 |
| ·融合蛋白诱导表达条件优化体系的建立及蛋白可溶性分析 | 第46-48页 |
| ·ETR1 蛋白的组氨酸激酶活性 | 第48-49页 |
| ·NO 饱和溶液处理对基因表达的影响 | 第49-50页 |
| ·一氧化氮（NO）对采后李果实线粒体膜氧化的影响 | 第50-56页 |
| ·NO 对果实呼吸速率、超氧阴离子和氢过氧化物含量的影响 | 第50-52页 |
| ·NO 对SOD、CAT 和POD 活性的影响 | 第52-54页 |
| ·线粒体膜变化 | 第54-56页 |
| 4 讨论 | 第56-59页 |
| ·乙烯受体蛋白的原核表达及NO 对乙烯受体基因表达的影响 | 第56-57页 |
| ·一氧化氮（NO）对采后李果实线粒体膜氧化的影响 | 第57-59页 |
| 5 结论 | 第59-60页 |
| 6 创新之处 | 第60-61页 |
| 参考文献 | 第61-71页 |
| 致谢 | 第71-72页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第72页 |
